ORIGINAL_ARTICLE
تعیین دوز مناسب تزریق هورمون اواپریم ( Ovaprim) جهت افزایش راندمان تکثیر مصنوعی اردک ماهی
بررسی حاضر به منظور دستیابی به تعیین دوز مناسب تزریق هورمون اواپریم (ovaprim) جهت القاء تخمریزی و افزایش راندمان تکثیر مصنوعی اردک ماهی انجام گرفت.آزمایش در 4 تیمار و3 تکرار انجام گرفت ودر هرتکرار 3 عدد مولد ماده و6 عدد مولد نر مورد تزریق قرارگرفتند. تیمار اول تا سوم بترتیب تزریق هورمون اواپریم ovaprim)) با دوزهای20،10 و30 میکروگرم وگروه شاهد تزریق عصاره غده هیپوفیزبه میزان 4 میلی گرم به ازای هرکیلوگرم وزن بدن ماهی بود. میانگین وزن مولدین ماده در تیمار اول7/520±1361، تیمار دوم 6/954 ± 3/1376، تیمارسوم 9/159± 1009 و شاهد 2/422 ± 2/1100گرم بود. درصد جوابدهی مولدین ماده در تیمار اول تا سوم بترتیب 24/19± 8/77، 24/19± 9/88 ، 91/50 ± 5/55 وشاهد24/19± 5/55 بود. درصد جوابدهی مولدین نر در تیمار اول تا سوم بترتیب 58/9±4/94، 26/19±9/88، 86/28±3/83 و شاهد 26/19± 9/88 بود. بر اساس آزمون کای دو انجام گرفته، بین دو متغیر درصد جوابدهی مولدین و دوزهای مختلف هورمون، اختلاف معنی دارآماری وجود نداشت. میزان لقاح تخمها بطور متوسط درتیمار اول10 ±1/87 ، تیمار دوم 7/7 ± 04/88 ، تیمارسوم2/5 ± 9/83 وشاهد 7/19± 4/72 درصد بود. با توجه به آزمون واریانس یکطرفه درسطح اطمینان95%، اختلاف معنی داری بین میانگین درصد لقاح در تیمارها دیده نشد.درصد چشم زدگی تخمها درتیمار اول 9/15 ± 6/66، تیمار دوم 3/22 ± 2/61، تیمارسوم 7/10 ± 3/58 و شاهد 04/15± 1/56 بود. باتوجه به آزمون کروسکال - والیس، بین تیمارها ازلحاظ درصد چشم زدگی، اختلاف معنی دار آماری مشاهده نگردید. میانگین درصد تفریخ درتیمار اول 8/19±41/27،تیمار دوم 9/26± 53/39، تیمارسوم 6/5 ± 18/95 و شاهد 4/12± 78/26 بود. طبق آزمون مقایسه میانگین چند دامنه دانکن(Duncan) اختلاف معنی داری بین تیمارها از لحاظ درصد تخم گشایی ملاحظه شد.با توجه به نتایج مطالعه حاضر، مناسبترین دوز تزریقی10و20 میکروگرم هورمون اواپریم به ازای هرکیلوگرم وزن بدن تعیین گردید.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103165_441471e7d4cdd75ad3d0782606f043c5.pdf
2015-02-20
1
15
10.22092/isfj.2015.103165
اردک ماهی
تکثیر
تخمریزی
هورمون اواپریم
لقاح
چشم زدگی تخم
علی
خوال
ali_khaval@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
سهراب
دژندیان
2
AUTHOR
فرشاد
ماهی صفت
3
AUTHOR
افشین
امیری سندسی
4
AUTHOR
منصور
شریفیان
sharif_23m@yahoo.com
5
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
سنجش سرانه مصرف آبزیان و ارزیابی موانع و راه کارهای توسعه مصرف در استان مرکزی
هدف اصلی این تحقیق ، تعیین و تحلیل میزان مصرف آبزیان در مناطق شهری و روستایی استان مرکزی در سال 1390 بود. برای دست یابی به اهداف تحقیق از روش پیمایشی با استفاده از پرسشنامه استفاده شد. پرسشنامه ها با مراجعه حضوری به هریک از نمونه های تحقیق (خانوار های شهری و روستایی) تکمیل گردید. با روش نمونهگیری چند مرحلهای تصادفی تعداد 2525 نفر در نمونه آماری قرار گرفتند. در اولین مرحله به صورت تمام شماری شهرها انتخاب شدند (12 شهر: آشتیان، اراک، تفرش، خمین، محلات، ساوه، شازند، دلیجان، کمیجان، فراهان، خنداب، زرندیه). در دومین مرحله به نسبت حجم خانوارهای شهری و روستایی، فراوانی نمونه مورد نظر در هر شهر تعیین شد. در این تحقیق 1455 نفر در مناطق شهری و 1070 نفر در مناطق روستایی مورد مطالعه قرار گرفتند. برای برآورد متوسط میزان مصرف آبزیان از فرمول استاندارد استفاده گردید. نتایج نشان داد که میانگین سرانه مصرف کل استان 81/5 کیلوگرم، در مناطق شهری70/6 کیلوگرم و در مناطق روستایی 62/4 کیلوگرم در سال بود. از طرفی، گرانی و نبود بازار خرید محلی نزدیک محل کار و سکونت از مهم ترین مشکلات و تنگناهای مصرف به شمار میرود. همچنین، میزان رضایت از قیمت و تنوع آبزیان موجود در بازار کمتر از حد متوسط بود (2/2 و 62/2 از 5). نتایج آزمون رگرسیون نیز نشان داد که پنج متغیر تحصیلات، تعداد اعضای خانوار، قیمت، میزان درآمد و میزان آشنایی با پخت آبزیان بیش از 57 درصد تغییرات میزان مصرف آبزیان را تبیین نمودهاند (57/0R2=). در پایان پیشنهاد شده است که برنامه ریزی برای افزایش سطح اطلاعات و فرهنگ عمومی، تنوع بخشی به روشها و برنامه های ترویج و اشاعه مصرف ماهی، گسترش مراکز توزیع و تولید ماهی و کمک به فعالیت تعاونی ها و اتحادیه در عرصه بازاریابی آبزیان و اتخاذ سیاست های حمایتی از جامعه صیادی برای ارتقای سطح رفاه اجتماعی آنها و در نهایت کاهش قیمت آبزیان، مورد توجه برنامه ریزان توسعه مصرف آبزیان و سلامت اجتماعی قرار گیرد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103166_ed0022d3a878d02d861a036f3ab46e97.pdf
2015-02-20
17
30
10.22092/isfj.2015.103166
سرانه مصرف
آبزیان
استان مرکزی
خانوار شهری
خانوار روستایی
شهرام
دادگر
shdadgar@ifro.ir
1
LEAD_AUTHOR
حسن
صالحی
hsalehi_ir@yahoo.com
2
AUTHOR
سید داود
حاجی میررحیمی
davood_hajimirrahimi@yahoo.com
3
AUTHOR
مهرداد
تیموری
4
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر غلظتهای زیرکشنده شیرابه فرفیون ترکمنی (Euphorbia turcomanica) بر برخی شاخص های بیوشیمیایی کبد ماهی آفانیوس گورخری (Aphanius dispar)
در این مطالعه، بررسی تاثیر سمیت زیر کشنده شیرابه گیاه فرفیون ترکمنی(Euphorbia turcomanica) در غلظت های صفر، 0055/0، 011/0 و 022/0 گرم بر لیتر بر روی برخی تغییرات شاخص های بیوشیمیایی کبد ماهی آفانیوس گورخری (Aphanius dispar) پس از گذشت 15 و 30 روز و در شرایط آزمایشگاهی مورد مطالعه قرار گرفت. ابتدا مقدار میانگین (± خطای استاندارد) 50LC شیرابه گیاه فرفیون ترکمنی در زمانهای 24، 48، 72 و 96 ساعت به ترتیب 14/0±28/0، 06/0±19/0، 03/0±14/0، 02/0±11/0 گرم بر لیتر بدست آمد. برخی از شاخص های بیوشیمیایی شامل مقادیر آنزیم آسپارتات آمینوترانسفراز (AST)، آلانین آمینوترانسفراز (ALT)، لاکتات دهیدروژناز (LDH)، کراتین فسفوکیناز (CK)، و آلکالین فسفاتاز (ALP) در بافت کبد ماهیان بعد از گذشت 15 و 30 روز از شروع آزمایش اندازه گیری شد. تغییرات معنیداری در سطوح آنزیم های AST، ALT، LDH، CK، و ALP درمقایسه با گروه کنترل در عصاره بافتی کبد در طول دوره آزمایش، مشاهده شد. این تغییرات به صورت افزایش معنی دار در سطوح آنزیم های AST، LDH و ALP و کاهش معنی دار در میزان فعالیت آنزیم های ALT و CK بود. همچنین روند کاهشی معنی داری در میزان پروتئین کل در عصاره بافت کبد متناسب با زمان در تماس بودن ثبت گردید. با توجه به نتایج این تحقیق، اطلاعات پایه درباره سمیت گیاه فرفیون ترکمنی بر روی ماهی آفانیوس گورخری و همچنین تعیین تاثیرات کاربرد شیرابه حاصل از این گیاه در آب به عنوان راهنما می تواند امکان پذیر باشد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103167_59e5e44ef9dba858f2fc1453a9086218.pdf
2015-02-20
31
47
10.22092/isfj.2015.103167
آفانیوس گورخری
شیرابه فرفیون ترکمنی
غلظت زیرکشنده
آنزیم کبدی
هما
زارع
1
AUTHOR
احمد
نوری
noori@hormozgan.ac.ir
2
LEAD_AUTHOR
مرتضی
یوسفزادی
3
AUTHOR
مهدی
بنایی
4
AUTHOR
بنایی م.، میرواقفی ع.، سوردا گومیل آ.، رفیعی غ. و احمدی ک.، 1391. مطالعه تغییرات فاکتورهای بیوشیمیایی خون و آسیبشناسی بافتی کبد ماهی قزل آلای رنگین کمان ( (Oncorhynchus mykissدر تماس با غلظتهای زیرکشنده دیازینون. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران، 313-297 ،(3)65.
1
بنایی م.، کیهانی ا. و احمدی، ک.، 1392. تاثیر 2،4-دی کلروفنوکسی استیک اسید (D-4،2) بر برخی پارامترهای بیوشیمیایی و آسیبشناسی بافتی در آبشش و کبد ماهی مولی (Poecilia sphenops). مجله بهرهبرداری و پرورش آبزیان، 105-83 ،(3)2.
2
Adedapo, A.A., Abatan, M.O. and Olorunsogo, O.O., 2004. Toxic effects of some plants in the genus Euphorbia on haematological and biochemical parameters of rats. Veterinarski Arhiv, 74, 53-62.
3
Agrahari, S. and Gopal, K., 2009. Fluctuations of certain biochemical constituents and markers enzymes as a consequence of monocrotophos toxicity in the edible freshwater fish, Channa punctatus. Pesticide Biochemistry and Physiology, 94, 5-9.
4
Akpa, L., Ajima, M., Nwani, C. and Onu, C., 2009. Toxic effect of Euphorbia tirucalli (Pencil tree) sap on Tilapia zillii fingerlings. Environment Conservation Journal, 10, 87-92.
5
Aydın, R. and Köprücü, K., 2005. Acute toxicity of diazinon on the common carp (Cyprinus carpio L.) embryos and larvae. Pesticide Biochemistry and Physiology, 82, 220-225.
6
Banaee, M., 2010. Influence of silymarin in decline of sub-lethal diazinon-induced oxidative stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Ph.D. Thesis, Aquaculture and Environmental Department, Natural Resource Faculty, Natural Resource and Agriculture Collage, Tehran University, Iran.
7
Banaee, M. and Ahmadi, K., 2011. Sub-lethal toxicity impacts of endosulfan on
8
some biochemical parameters of the freshwater crayfish (Astacus leptodactylus). Research Journal of Environmental Sciences, 5, 827-835.
9
Banaee, M., Mirvagefei, A., Rafei, G. and Majazi Amiri, B., 2008. Effect of sub-lethal diazinon concentrations on blood plasma biochemistry. International Journal of Environmental Research, 2, 189-198.
10
Banaee, M., Sureda, A., Mirvaghefi, A. and Ahmadi, K., 2011. Effects of diazinon on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pesticide Biochemistry and Physiology, 99, 1-6.
11
Banaee, M., Sureda, A., Zohiery, F., Hagi, B.N. and Garanzini, D.S., 2014. Alterations in biochemical parameters of the freshwater fish, Alburnus mossulensis, exposed to sub-lethal concentrations of Fenpropathrin. International Journal of Aquatic Biology, 2, 58-68.
12
Bhattacharya, H., Xiao, Q. and Lun, L., 2008. Toxicity studies of nonylphenol on rosy barb (Puntius conchonious): A biochemical and histopathological evaluation. Tissue and Cell, 40, 243-249.
13
Coad, B.W., 1998. Threatened fishes of the world: Lebias ginaonis (Holly, 1929) (Cyprinodontidae). Environmental Biology of Fishes, 51: 284-284.
14
Coad, B.W. and Abdoli, A., 2000. Systematics of an isolated population of tooth-carp from northern Iran (Actinopterygii: Cyprinodontidae). Zoology in the Middle East, 21, 87-102.
15
Dagang, W., Sorg, B., Adolf, W., Seip, E. and Hecker, E., 1992. Oligo- and macrocyclic diterpenes in thymelaeaceae and euphorbiaceae occurring and utilized in Yunnan (Southwest China). 2. Ingenane type diterpene esters from Euphorbia nematocypha Hand.-Mazz. Phytotherapy Research, 6, 237-240.
16
Dickmeis, T., Rastegar, S., Aanstad, P., Clark, M., Fischer, N., Plessy, C., Rosa, F., Korzh, V. and Strähle, U., 2001. Expression of brain subtype creatine kinase in the zebrafish embryo. Mechanisms of development, 109, 409-412.
17
El-Sayed, Y.S. and Saad, T.T., 2008. Subacute Intoxication of a Deltamethrin-Based Preparation (Butox® 5% EC) in Monosex Nile Tilapia, Oreochromis niloticus L. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology, 102, 293-299.
18
Fafioye, O., Adebisi, A. and Fagade, S., 2004. Toxicity of Parkia biglobosa and Raphia vinifera extracts on Clarias gariepinus juveniles. African Journal of Biotechnology, 3, 627-630.
19
Fai, P. and Fagade, S., 2005. Acute toxicity of Euphorbia kamerunica on Oreochromis niloticus. Ecotoxicology and environmental safety, 62: 128-131.
20
Gabriel, U., Obomanu, F. and Edori, O., 2009. Haematology, plasma enzymes and organ indices of Clarias gariepinus after intramuscular injection with aqueous leaves extracts of Lepidagathis alopecuroides. African Journal of Biochemistry Research, 3, 312-316.
21
Gong, H.-Y., Wu, J.-L., Huang, W.-T., Ji-Fan Lin, C. and Weng, C.-F., 2004. Response to acute changes in salinity of two different muscle type creatine kinase isoforms, from euryhaline teleost (Oreochromis mossambicus) gills. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, 1675, 184-191.
22
Grzyb, K. and Skorkowski, E.F., 2005. Characterization of creatine kinase isoforms in herring (Clupea harengus) skeletal muscle. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 140, 629-634.
23
Gundidza, M., Sorg, B. and Hecker, E., 1993. A skin irritant principle from Euphorbia matabelensis Pax. Journal of Ethnopharmacology, 39, 209-212.
24
Haagensen, L., Jensen, D.H. and Gesser, H., 2008. Dependence of myosin-ATPase on structure bound creatine kinase in cardiac myfibrils from rainbow trout and freshwater turtle. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 150, 404-409.
25
Hrbek, T., Keivany, Y. and Coad, B.W., 2006. New species of Aphanius (Teleostei, Cyprinodontidae) from Isfahan Province of Iran and a reanalysis of other Iranian species. Copeia, 2006, 244-255.
26
Kavitha, C., Ramesh, M., Kumaran, S.S. and Lakshmi, S.A., 2012. Toxicity of Moringa oleifera seed extract on some hematological and biochemical profiles in a freshwater fish, Cyprinus carpio. Experimental and Toxicologic Pathology, 64, 681-687.
27
Korkmaz, N., Cengiz, E., Unlu, E., Uysal, E. and Yanar, M., 2009. Cypermethrin-induced histopathological and biochemical changes in Nile tilapia (Oreochromis niloticus), and the protective and recuperative effect of ascorbic acid. Environmental Toxicology and Pharmacology, 28, 198-205.
28
Kumar, A., Prasad, M., Mishra, D., Srivastav, S.K. and Srivastav, A.K., 2010. Toxicity of aqueous extract of Euphorbia tirucalli latex on catfish, Heteropneustes fossilis. Ecotoxicology and environmental safety, 73, 1671-1673.
29
Kumar, N., Antony Jesu Prabhu, P., Pal, A., Remya, S., Aklakur, M., Rana, R., Gupta, S., Raman, R. and Jadhao, S., 2011. Anti-oxidative and immuno-hematological status of Tilapia (Oreochromis mossambicus) during acute toxicity test of endosulfan. Pesticide Biochemistry and Physiology, 99, 45-52.
30
Murray, R.K., Granner, D.K., Mayes, P.A. and Rodwell, V., 2003. Harper’s Illustrated Biochemistry, Twenty-Sixth Edition. Lange Medical Books/McGraw-Hill (Medical Publishing Division), New York. 420P.
31
Mwine, T.J., Van Damme, P., Hastilestari, B.R. and Papenbrock, J., 2013. Euphorbia tirucalli L.(Euphorbiacaea): the miracle tree: current status of knowledge. African natural plant products, volume II: discoveries and challenges in chemistry, health, and nutrition, 1127, 4-17.
32
Ozawa, E., Hagiwara, Y. and Yoshida, M., 1999. Creatine kinase, cell membrane and Duchenne muscular dystrophy, Muscle Physiology and Biochemistry. Springer US, pp. 143-151.
33
Patil V.K. and David M., 2008. Behaviour and respiratory dysfunction as an index of malathion toxicity in the freshwater fish, Labeo rohita (Hamilton). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 8, 233-237.
34
Petrovic, S., Ozretiç, B. and Krajnovic-Ozretic, M., 1996. Cytosolic aspartate aminotransferase from the grey mullet (Mugil auratus Risso) red muscle: Isolation and properties. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 28, 873-881.
35
Rajeh, M.A.B., Kwan, Y.P., Zakaria, Z., Latha, L.Y., Jothy, S.L. and Sasidharan, S., 2012. Acute toxicity impacts of Euphorbia hirta L extract on behavior, organs body weight index and histopathology of organs of the mice and Artemia salina. Pharmacognosy research, 4,170.
36
Rao, J.V., 2006. Toxic effects of novel organophosphorus insecticide (RPR-V) on certain biochemical parameters of euryhaline fish, Oreochromis mossambicus. Pesticide Biochemistry and Physiology, 86: 78-84.
37
Reichenbacher, B., Kamrani, E., Esmaeili, H.R. and Teimori, A., 2009. The endangered cyprinodont Aphanius ginaonis (Holly, 1929) from southern Iran is a valid species: evidence from otolith morphology. Environmental Biology of Fishes, 86, 507-521.
38
Saha, S. and Kaviraj, A., 2009. Effects of cypermethrin on some biochemical parameters and its amelioration through dietary supplementation of ascorbic acid in freshwater catfish Heteropneustes fossilis. Chemosphere, 74, 1254-1259.
39
Saravanan, M., Prabhu Kumar, K. and Ramesh, M., 2011. Haematological and biochemical responses of freshwater teleost fish Cyprinus carpio (Actinopterygii: Cypriniformes) during acute and chronic sublethal exposure to lindane. Pesticide Biochemistry and Physiology, 100, 206-211.
40
Shanmugam, S., Sathish Kumar, T. and Panneer Selvqam, K., 2010. Laboratory Handbook on Biochemistry. Asoke K. Ghosh, PHI Learning Private Limited, M-97New Delhi-110001. 141 P.
41
Singh, S.K., Yadav, R.P., Singh, D. and Singh, A., 2004. Toxic effect of two common Euphorbiales latices on the freshwater snail Lymnaea acuminata. Environmental Toxicology and Pharmacology, 15, 87-93.
42
Srivastava, A.S., Oohara, I., Suzuki, T., Shenouda, S., Singh, S.N., Chauhan, D.P. and Carrier, E., 2004. Purification and properties of cytosolic alanine aminotransferase from the liver of two freshwater fish, Clarias batrachus and Labeo rohita. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 137, 197-207.
43
Tiwari, S. and Singh, A., 2003. Control of common freshwater predatory fish, Channa punctatus, through Nerium indicum leaf extracts. Chemosphere, 53, 865-875.
44
Tiwari, S. and Singh, A., 2004. Piscicidal and anti-acetylcholinesterase activity of Euphorbia royleana stem bark extracts against freshwater common predatory fish Channa punctatus. Environmental Toxicology and Pharmacology, 18, 47-53.
45
Tiwari, S. and Singh, A., 2006. Biochemical stress response in freshwater fish Channa punctatus induced by aqueous extracts of Euphorbia tirucalli plant. Chemosphere, 64, 36-42.
46
Tiwari, S. and Singh, A., 2009. Changes in some biochemical parameters in the liver and muscle of Colisa fasciatus due to toxicity of ethanolic extract of Nerium indicum Mill.(Lal Kaner) latex. Natural Product Radiance, 8, 48-54.
47
Velišek, J., Svobodova, Z. and Machova, J., 2009. Effects of bifenthrin on some haematological, biochemical and histopathological parameters of common carp (Cyprinus carpio L.). Fish Physiology and Biochemistry, 35, 583-590.
48
Velíšek, J., Dobšíková, R., Svobodova, Z., Modra, H. and Luskova, V., 2006. Effect of deltamethrin on the biochemical profile of common carp (Cyprinus carpio L.). Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 76: 992-998.
49
Vutukuru, S.S., Prabhath, N.A., Raghavender, M. and Yerramilli, A., 2007. Effect of arsenic and chromium on the serum amino-transferases activity in Indian major carp, Labeo rohita. International journal of environmental research and public health, 4, 224-227.
50
Wells, R., McIntyre, R., Morgan, A. and Davie, P., 1986. Physiological stress responses in big gamefish after capture: observations on plasma chemistry and blood factors. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 84, 565-571.
51
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی شکوفایی جلبکی مضر(کشند قرمز) Cochlodinium polykrikoides درآبهای خلیج فارس
این تحقیق در ادامه پایش شکوفایی جلبکی مضر Cochlodinium polykrikoides طی سالهای 1389و 1390 درآبهای خلیج فارس انجام گردید. در استان هرمزگان رده دیاتومهها و دینوفلاژله ها بالاترین فراوانی پلانکتون گیاهی را داشت. آنالیز واریانس اختلاف میان نوترینت ها را در بخش های سه گانه استان نشان نداد( P>0/05 )، اما در ماه های بررسی تفاوت معنی دار بود(P< 0/05). شکوفایی گونه کوکلودینیوم بیشتر در بخش مرکزی و طی فصل بهار و سپس در بخش شرقی و طی تابستان حادث شد، اما مرگ و میر ماهی درپی نداشت.در استانهای بوشهر و خوزستان شکوفایی جلبکی گونه کوکلودینیوم رخ نداد.در استان بوشهر چهار رده باسیلاریوفیسه ، سیانوفیسه ،دینوفیسه و هاپتوفیته شناسایی شدند. بیشترین فراوانی فیتوپلانکتونی در مهر ماه 1389 به دلیل میزان 88.80 درصدی گونه Phaocystis sp. بویژه در ایستگاه بوشهر ، عسلویه و کبگان بود.آنالیز واریانس ، نشان داد که میزان نوترینت ها بجز آمونیاک در ماههای مختلف دارای اختلاف می باشند (P< 0/05).در استان خوزستان دیاتومه ها ، دینوفلاژله ها و سیانوفیسه ها به ترتیب تنوع فیتوپلانکتونی را تشکیل داد.آنالیز واریانس نشان داد، فقط مقادیر آمونیاک در ایستگاههای نمونه برداری دارای اختلاف آماری میباشد (P< 0/05) ، دامنه تغییرات نوترینت ها در محدوده نرمال آبهای دریایی و نسبت N:P محاسبه شده در تمامی ماهها پایین تر از نسبت Redfield(16:1) بود،که نشان میدهد شرایط برای بروز شکوفایی گونه کوکلودینیوم مهیا نبوده است.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110176_25a51837379027a3b07b72de7a3803ba.pdf
2015-02-20
49
60
10.22092/isfj.2017.110176
شکوفایی جلبکی مضر(کشند قرمز)
Cochlodinium polykrikoides
مواد مغذی
خلیج فارس
ایران
غلامعباس
زرشناس
zarshenas1@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
مطلبی
motalebi@ifro.ir
2
AUTHOR
فاطمه
محسنی زاده
3
AUTHOR
سیمین
دهقان
4
AUTHOR
فرشته
سراجی
saraji20042000@yahoo.com
5
AUTHOR
کیومرث
روحانی
6
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه هیستومورفومتریک گناد نر کپور نقرهای ) (Hypophthalmichthys molitrix در دو رده سنی بالغ و نابالغ
در این پژوهش خصوصیات مورفولوژی و بافت شناسی بیضه 20 ماهی کپور نقرهای در دو رده یا گروه سنی زیر دو سال و چهار سال مطالعه گردید. در گروه1: 10 ماهی با میانگین وزنی 66/0± 25/1 کیلوگرم و میانگینSD) ±)طول کل بدن 41/1±68/43 سانتیمتر و با حدود سنی 2 سال ، در گروه2: 10 ماهی کپور نقرهای نر با میانگین SD) ±)وزنی 52/0± 71/5 کیلوگرم و میانگین SD) ±)طول کل بدن 64/1 ±5/81 سانتیمتر و با حدود سنی 4 سال قرار گرفتند. میانگین SD) ±)وزن بیضه ماهیان گروه 1و2 نیز به ترتیب 47/1±34/2 و 81/25 ± 33/83 گرم و میانگینSD) ±)GSI 22/0± 19/0 و 97/4 ± 45/1 بود. از بیضهها نمونههایی به ضخامت حداکثر نیم سانتیمتر برداشت و پس از ثبوت در محلول بوئن و طی مراحل مختلف تهیه مقاطع بافتی، برشهایی به ضخامت 5 تا 6 میکرومتر تهیه و مورد رنگ آمیزی هماتوکسیلین- ائوزین وPAS قرار گرفتند.در مطالعات میکروسکوپی مشخص گردید که بیضه ماهی کپور نقرهای در هر دو گروه از نوع لوبولار (قطعه ای) و در داخل لوبولهای بیضه ماهیان گروه 2 اسپرماتوژنز از نوع سیستیک یا کیسهای میباشد. ولی در بیضه ماهیان گروه 1 هیچگونه فعالیت اسپرماتوژنزی مشاهده نشد، زیرا تنها سلولی که در کیسهها وجود داشت سلولهای جنسی اولیه بود. در بیضه ماهیان گروه 2، تعداد سلولهای جنسی اولیه به صورت معنی داری کاهش یافته، اما تعداد زیادی سلولهای اسپرماتوژنیک در مراحل مختلف رشد و تمایز شامل سلولهای اسپرماتوگونی، اسپرماتوسیت اولیه و ثانویه، اسپرماتید اولیه، نهایی و اسپرماتوزوئید وجود داشت که هر یک از این سلولها در کیسههای مجزایی قرارداشتند. نتایج حاصل از مطالعات هیستومتری این پژوهش نشان داد که در میانگینSD) ±)قطر هسته سلولهای جنسی اولیه در بیضه گروه 2 (44/0± 13/6) و گروه 1 (44/0±97/6) میکرومتر اختلاف معنی داری وجود ندارد. ولی در بیضه ماهیان گروه2، میانگینSD) ±)قطر هسته سلولهای اسپرماتوگونی 11/0 ± 97/2 میکرومتر، سلولهای اسپرماتوسیت اولیه 11/0 ±59/3 میکرومتر، سلولهای اسپرماتید اولیه 76/0± 59/1 میکرومتر،سلولهای اسپرماتید نهایی 13/0 ± 24/1، سلولهای اسپرماتوزوئید 05/0 ± 16/1 و طول اسپرماتوزوئید 95/1 ± 41/17 میکرومتر بود. یافته قابل توجه به دست آمده عدم بالغ بودن بیضه ماهیان در گروه 1 با میانگینSD) ±) وزنی (66/0± 25/1) کیلوگرم و طول بدن (41/1± 67/43) سانتیمتر با سن حدود 2 سال و بلوغ بیضه در ماهیان گروه 2 با میانگین SD) ±) وزنی (52/0± 71/5) کیلوگرم و طولی(64/1 ± 5/81) سانتیمتر با سن حدود 4 سال در شرایط آب و هوایی استان خوزستان میباشد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103169_337c2059dd222c38d784fb96c3878a12.pdf
2015-02-20
61
72
10.22092/isfj.2015.103169
بافت شناسی
میکرومتری
بیضه
کپور نقرهای (Hypophthalmichthys molitrix)
خوزستان
نعیم
عرفانی مجد
naeemalbo@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
مهرزاد
مصباح
mehrmesbah@yahoo.com
2
AUTHOR
سمیه
صیدی
s_seydi20@yahoo.com
3
AUTHOR
پور مهدی بروجنی م.، (1379). بررسی برخی فاکتورهای بیولوژیک و هیستولوژیک گنادهای کپور معمولی در طی دو فصل پرورش. پایان نامه دکترای دامپزشکی، شماره 7958341، صفحات: 54-11
1
حسین زاده صحافی ه. و سلطانی م.،1380. زیست شناسی تولید مثل ماهی شوورت (Sillag sihama) در خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران، مجله علمی شیلات، بهار1380، سال دهم، شماره یک، صفحات: 54-37
2
دریانبرد غ. و شعبانی .، ع 1388. تولیدمثل و بلوغ جنسی کفال طلایی در آبهای ایرانی دریای خزر، پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، 16: (ویژه نامه 2)، صفحات: 88-77
3
سالارپور ع. و درویشی م.، 1386. زیست شناسی تولید مثل و تغذیه ماهی موتو منقوط (Encracicholina punctifer) در آب های ساحلی جزیره قشم. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر عباس، مجله علمی شیلات ایران، سال هفدهم، شماره یک، بهار 1387، صفحات: 53-45.
4
شجیعی ه. و فضلی ح.، 1387. بررسی بیولوژی تولیدمثل در سیاه ماهی(Capoeta capoeta gracils) در سواحل جنوبی دریای خزر. دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان، فصلنامه علمی _ پژوهشی زیست شناسی جانوری، سال اول، شماره دوم، زمستان 87، صفحات 34-31
5
شکری م.، 1374. روش های بررسی بیولوژیکی غدد جنسی ماهیان . پروژه مرکز تحقیفات شیلات خوزستان. صفحات 42-23
6
صفاری م. و معتمد، م.، 1368.. پرورش متراکم ماهی. تألیف جاناتان شفرد، انتشارات دانشگاه گیلان، صفحات: 108 تا 113
7
فرحمند ح.، 1372. ایجاد تغییر جنسیت در ماهی کپور معمولی بوسیله هورمون 17– آلفا متیل تستوسترون. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس، دانشکده منابع طبیعی علوم دریایی، صفحات: 55-41
8
کمالی ع. و ولی نسب ت 1388. تولید مثل ماهیان. تألیف آگارول، ن. ک، مؤسسه تحقیقات شیلات ایران، مدیریت اطلاعات علمی و روابط بین الملل ایران، صفحات 78-65
9
نیکبخت م.، 1386. مطالعه میکروسکوپیک بافت لنفوئیدی ضمیمه لوله گوارش ماهی بنی در دو فصل گرم و سرد. پایان نامه دکتری تخصصی علوم تشریحی دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، شماره 8625621، صفحات: 4-2 و 9.
10
Agrawal N., 2004. Studies on the developmental rhythm in the testis of S.Plagiostomus. Acta Anatomica, 90, 133-144.
11
Angelito C., Emiliano V., Josefina M. and Parvico F. 1987 . The effects of water hardness on the hatching and viability of silver carp eggs. Aquaculture, 111-118.
12
Arabaci M., Cagirgan H. and Sari M., 2001. Induction of spawning in Common carp ( Cyprinus carpio ) Using with haloperidol: Effects of different treatment time and determination of latency period dependence on temperature. Turkish Journal of Fisheries Aquatic Sciences, 1, 1-5.
13
Bapary M.A. J. and Fainuulelei P . 2009. Environmental control of gonadal development in the tropical damselfish Chrystiptea cyanea. Marin Biology Research, 5(5): 462-469
14
Claereboudt R.M. , Al-Oufi H.S., Mcilwain J.L. and Goddard J.S. 2007. Spatial variation in age and growth of the king fish (Scomberomorus commerson) in the coastal waters of the Sultanate of Oman, The Journal of Fisheries Research, 73: 283-298.
15
Dziewulska K. and Domagala J., 2002. Histology of Salmonid testes during maturation. Reproductive Biology, 3, (1), 47-63.
16
El-Boray F.K. 2001. Histological changes in the testes of the fish Gerres oyena during the reproductive cycle in Suez Bay. Egyptian Journal Aquatic. Biology & Fisheries. 5, (2), 83-93.
17
El-Halfawy M.M., Ramadan, M. A. and Mahmod F.W. 2007. Reproductive biology and histological studies of the Grey mullet, Liza ramada in lake Timsah, Suez Canal. Egyptian Journal of Aquatic Research. 33(1), 434-454.
18
Gabillard J.C., Kamanger B.B. and Montserrat N., 2009. Coordinated regulation of the GH/IGF system genes during refeeding in rainbow trout (onchorhynchus mykiss). Journal of Endocrinology, 191: 15-28.
19
Ghomi M.R., Zarei M. and Sohrabnejad M. 2011. Effects of photoperiod on growth and conversion of juvenile wild carp, Cyprinus carpio. Journal of Acta Biologica Hungarica, 62(2): 285-289.
20
Grier H.J., 1993. Comparative organization of sertoli cells including the sertoli cell barrier. In: Russell, L.D., Griswold, M.D. (Eds.), The sertoli cell. Cache River Press, Clearwater, P: 703–739.
21
Kayaba T., Takeda N. and Yamauchi K. 2001. Ultra structure of the oocytes of the Japanese eel Anguilla japonica during artificially induced sexual maturation. Fish Science, 67 (5): 870–879.
22
Maktabi S., Fazlara A. and Ebrahimian S., 2011. Incidence of Listeria species in farmed tropical fish in Khuzestan, Iran. World Journal of Fish and Marine Science, 3(3): 206-209
23
Nagahama Y., 1983. The functional morphology of teleost gonads. In: Hoar W.S., Randall D.j., Donaldson E.M. (Eds). Academic Press, New York, P: 223-275.
24
Ratty F. , Kelly R. and Laurs M.R., 1989. Testes morphology, histology and spermatogenesis in South Pacific Albacore Tuna, Distributed as working paper at south pacific Albacore research Workshop held at Suva, Fiji, 1-15.
25
Schulz R.W., Franca L.R., Lareyre J.J., LeGac F., Chiarini-Garcia H., Nobrega R.H. and Miura T., 2010. Spermatogenesis in fish. General and Comparative Endocrinology 165, 390–411.
26
Thorogood J., 1986. Aspects of reproductive biology of the Southern blue Fish Tuna (Thannus maccoyii). Fish Research 4:297-315
27
Welsel F.G., 1943. A Histological study of the testes of the Sockeye Salmon. Journal of Morphology, 73 (2), 227-229.
28
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر جایگزینی پروتئین کنسانتره سویا بجای پودرماهی بر شاخصهای رشد و ترکیب لاشه تاسماهی سیبری (Acipenser baerii)
بمنظور بررسی تاثیر پروتئین کنسانتره سویا بر شاخصهای رشد، ضریب تبدیل غذا و ترکیب لاشه تاسماهی سیبری تحقیقی به مدت 8 هفته طراحی و اجرا گردید. تعداد120عدد بچه تاسماهی سیبری با وزن متوسط (±SD) 31/3 ± 44/186 گرم در قالب4 تیمار به مدت 8 هفته با4 جیره غذایی که پروتئین کنسانتره سویا به ترتیب در سطوح 0، 10، 20 و 30% جایگزین پودرماهی شده بود تا حدسیری تغذیه شدند. بیومتری در دوره های 15روزه انجام گرفت. در پایان دوره پرورش30% ازجمعیت ماهیان بشکل تصادفی انتخاب و جهت تعیین ترکیب شیمیایی لاشه به آزمایشگاه ارسال گردید. اختلاف معنی داری در وزن نهایی، درصد افزایش وزن بدن، ضریب رشد ویژه، نسبت بازده پروتئین و ضریب تبدیل غذا در ماهیان تغذیه شده از جیره هایی که در آن پروتئین سویا به میزان10، 20 و30% جایگزین پودرماهی شده بود نسبت به ماهیان تیمار شاهد مشاهده نشد.
همچنین با افزایش پروتئین کنسانتره سویا در جیره، پروتئین و چربی لاشه افزایش یافت، بطوریکه بیشترین میزان پروتئین و چربی لاشه در ماهیان تغذیه شده از جیره ای ثبت گردید که در آن20% پروتئین کنسانتره سویا جایگزین پودرماهی گردیده بود. نتایج این تحقیق نشان داد که پروتئین کنسانتره سویا از پتانسیل مناسبی جهت جایگزینی با پودرماهی در جیره غذایی تاسماهی سیبری برخوردار است.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103170_340f9e0cf2bea3e62271de9ef6794bca.pdf
2015-02-20
73
84
10.22092/isfj.2015.103170
تاسماهی سیبری
پودرماهی
پروتئین کنسانتره سویا
جایگزینی
شاخصهای رشد
ترکیب لاشه
محمدعلی
یزدانی ساداتی
myazdanisadati@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
احسان
رضایی
2
AUTHOR
ابراهیمی ع.؛ پور رضا، ج.؛ پاناماریوف،س.؛ کمالی، ا. حسینی، ع.، 1383. اثر مقادیر مختلف پروتئین و چربی بر رشد و ترکیب شیمیایی لاشه بچه ماهیان انگشت قد فیلماهی (Husohuso) . مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی، سال 11. شماره 3. 141- 151.
1
امدادی ب .، سجادی م .، یزدانی ع. و شکوریان م.،1392. تاثیر جایگزینی مقادیر مختلف آرد ماهی توسط کنجاله سویا در غذایی ماهیان اوزون برون ( Acipenserstellatus) بر میزان رشد ، ضریب تبدیل غذایی و میزان ترکیبات شیمیایی لاشه ، عضله و بافت کبد. مجله علمی شیلات ایران . شماره 2. 34-25.
2
Abdelghany A.E. and Ahmad H.M., 2002. Effects of feeding rates on growth and production of Nile tilapia, commoncarp and silver carp polycultured in fertilized ponds. Aquaculture Research, 33: 415 – 423.
3
Albert G.J. and Metian T.M., 2008. Global overview on the use of fish meal and fish oil in industrially compounded aquafeeds: trends and future prospects. Aquaculture, 28: 5146–5158.
4
AOAC 1995. Official methods of analysis of the association ofofficial analytical chemists. AOAC, Arlington.
5
Bakke-McKellep A.M., Press C.M.L., Baeverfjord G., Krogdahl Å. and Landsverk T., 2000. Changes inimmune and enzyme histochemical phenotypes of cells in the intestinal mucosa of Atlantic salmon, Salmo salar L., with soybean meal-induced enteritis. Journal of Fish Diseases, 23: 115-127.
6
Bergheim A. and Sveier H., 1995. Replacement of fish meal in salmonid diets by soya mealreduces phosphorus excretion. Aquaculture International, 3: 265–268.
7
Baeverfjord G. and Krogdahl A., 1996. Development and regression of soybean meal induced enteritis in Atlantic salmon, Salmo salar L., distal intestine: a comparison with the intestines of fasted fish. Journal of Fish Diseases, 19: 375–387.
8
Cho S.J., Juillerat M.A. and Lee C.H., 2008. Identification of LDL-receptor transcription stimulatingpeptides from soybean hydrolysate in human hepatocytes. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 56 (12): 4372–4376.
9
Dabrowski K., Poczyczynski P., Ko¨ck G. and Berger R., 1989. Effect of partially or totally replacing fishmealprotein by soybean meal protein on growth, food utilisation and proteolytic enzyme activities in rainbowtrout ŽSalmo gairdneri.. New in vivo test for endocrine pancreatic secretion. Aquaculture, 77: 29–49.
10
Duffus C.M. and Duffus J.H., 1991. In: D’Mello, F.J.P., Duffus, C.M., Duffus, J.H. ŽEds.., Toxic Substances inCrop Plants. The Royal Society of Chemistry, Thomas Graham House, Science Park, Cambridge CB44WF, Cambridge, pp. 1–21.
11
FAO, 2012. Feeding the growth aquaculture sector: An analysis. Sixth Session of the Sub-Committee on Aquaculture. Committee on Fisheries, Cape Town, South Africa.
12
Gatlin D.M., Barrows F.T., Brown P., Dabrowski K., Gaylord T.G., Hardy R.W., Herman E., Hu G., Krogdahl, A., Nelson R., Overturf K., Rust M., Sealy W., Skonberg D., Souza E.J., Stone E.D., Wilson R. and Wurtele E., 2007. Expanding the utilization of sustainable plant products in aquafeeds: A review. Aquaculture Research, 38: 551–579.
13
Hansen A.C., Karlsen O., Rosenlund G., Rimbach M. and Hemre G.I., 2007. Dietary plant protein utilization in Atlantic cod, Gadus morhua L. Aquaculture Nutrition, 13: 200–215.
14
Hrčková M., Rusňáková M. and Zemanovič J., 2001. Enzymatic hydrolysis of defatted soy flour by three different proteases and their effect on the functional properties of resulting protein hydrolysates. Czech Journal of Food, 20 (1): 7–14.
15
Hung S.S.O., Paul B. L., Conte F. and Storebakken T., 1989. Growth and feed efficiency of white sturgeon (A. transmontanus) to utilize different carbohydrate. J. Nutr, 119: 727-733.
16
Ingh T.S.G.A.M.V.D., Olli J.J. and Krogdahl A., 1996. Alcohol-soluble components in soybeans cause morphological changes in the distal intestine of Atlantic salmon, Salmo salar L. Journal of Fish Diseases, 19: 47–53.
17
Jahan P., Watanabe T., KironV. and Satoh S.C., 2003. Improved carp diets based on plant protein sources reduce environmental phosphorus loading. Fisheries Science, 699 (2): 219–225.
18
Krogdahl A., Lea T.B. and Olli J.J., 1994. Soybean proteinase inhibitors affect intestinal trypsin activities andamino acid digestibilities in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Comp. Biochemical physiology, 107A, 215–219.
19
Lemieux H., Blier P. and Dutil J.D., 1999. Do digestive enzymes set a physiological limit on growth rate andfood conversion efficiency in the Atlantic cod (Gadus morhua)? Fish Physiology and Biochemistr, 20: 293-303.
20
Liu Y.J., Liu D.H., Feng J. and Tian L.X., 2000. Soy protein concentrate can efficiently replace fish meal in tiger shrimp feeds. Research report Fish Nutrition Laboratory, Zhongshan University, P.R. China.
21
Lovell R.T., 1988. Use of soybean products in diets for aquaculture species: Revised. Soybean utilization alternatives, February 16±18. The Centre for Alternative Crops and Products, University of 14 Minnesota, pp. 335-361.
22
Ma Y.S., Wang L.T., Sun X.H., Ma B.C., Zhang J.W., Gao F.Q. and Liu C.L., 2013. Study on hydrolysis conditions of flavourzyme in soybean polypeptide alcalase hydrolysate. Advance Maternal Research. 652: 435–438.
23
Mamauaga R.E.P., Koshio S., Ishikawa M., Yokoyama S., Gao J., Nguyen B.T. and Ragaza J.A., 2011. Soy peptide inclusion levels influence the growth performance, proteolytic enzyme activities, blood biochemical parameters and body composition of Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Aquaculture, 321: 252–258.
24
Mambrini M., Roem A.J., Cravèdi J.P., Lallès J.P. and Kaushik S.J., 1999. Effects of replacing fish meal with soy protein concentrate and of DL-methionine supplementation in high-energy, extruded diets on the growth and nutrient utilization of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal Animal Science, 77: 2990–2999.
25
Martinez Liorens S., Vidal A.T., M Onino A.V., Torres M.P. and Cerda M.J., 2007. Effects of dietary soybean oil concentration on growth, nutrient utilization and muscle fatty acid composition of gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture, 38: 76-81.
26
Mohsen A.A. and Lovell R.T., 1990. Partial substitution of soybean meal with animal protein sources in diets for channel catfish. Aquaculture, 90: 303–311.Olli J.J., Hjelmeland K. and Krogdahl A., 1994. Soybean trypsin inhibitors in diets for Atlantic salmon Salmosalar, L.: effects on nutrient digestibilities and trypsin in pyloric caeca homogenate and intestinal content.Comparative Biochemical Physiology. 4., 923–928.
27
Olli J.J. and Krogdahl A., 1995. Alcohol soluble components of soybeans seem to reduce fat digestibility in fishmeal-based diets for Atlantic salmon, Salmo salar L. Aquaculture Research, 26: 831–835.
28
Olli J.J., Krogdahl A. and Vabeno A., 1995. Dehulled solvent extracted soybean meal as a protein source in diets for Atlantic salmon, Salmo salar . Aquaculture Research, 26: 167–174.
29
Reigh R.C. and Ellis S.C., 1992. Effects of dietary soybean and fish-protein ratios on growth and body composition of red drum _Sciaenops ocellatus fed isonitrogenous diets. Aquaculture, 104: 279–292.
30
Richardson N.L., Higgs D.A., Beames R.M. and McBride J.R., 1985. Influence of dietary calcium, phosphorous,zinc and sodium phytate level on cataract incidence, growth and histopathology in juvenile Chinooksalmon Oncorhynchus tshawytscha.. Journal of Nutrition, 115: 553–567.
31
Roosta H.R., Javadi T. and Nazari F., 2011. Isolation and characterization of trypsin inhibitors (Kunitz Soybean Trypsin Inhibitor, Bowman-birk Inhibitor) in Soybean. Advance environment Biology. 5 (1): 145–153.
32
Sandholm M., Smith R.R., Shih J.C.H. and Scott M.L., 1976. Determination of antitrypsin activity on agarplates: relationship between antitrypsin and biological value of soybean for trout. Journal of Nutrition, 106: 761-766.
33
Song Z., Li Haiyun., Wang J., Li P., Sun Y. and Zhang L., 2014. Effects of fishmeal replacement with soy protein hydrolysates on growth performance, blood biochemistry, gastrointestinal digestion and muscle composition of juvenile starry flounder (Platichthys stellatus).Aquaculture, 426: 96-104.
34
Spinelli J., Houle C.R. and Wekell J.C., 1983. The effect of phytates on the growth of rainbow trout Salmogairdneri fed purified diets containing varying quantities of calcium and magnesium. Aquaculture, 30: 71–83.
35
Synder H.E. and Kwon T.W., 1987. Soybean utilization. Van Nostrand Reinhold, New York.
36
Swick R.A., Akiyama D.M., Boonyaratpalin M. and Creswell D.C., 1995. Use of soybean meal and synthetic methionine in shrimp feed. American Soybean Association, Technical Bulletin. 5: 211-216
37
Tacon A.G.J. 1994. Feed ingredients for carnivorous fish species alternatives to fishmeal and other fishery resources. Fisheries Circular No 881. FAO, Rome, Italy.
38
Ueberschaer B. and Clemmesen C., 1992. A comparison of the nutritional condition of herring larvae as determined by two biochemical methods - tryptic enzyme activity and RNA/DNA ratio measurements. ICES Journal of Marine Science, 49: 245-249.
39
Ueberschaer B., Pedersen B. and Hjelmeland K., 1992. Quantification of trypsin with radioimmunoassay in herring larvae (Clupea harengus) compared with a highly sensitive fluorescent technique to determine tryptic enzyme activity. Marine Biology, 113: 469-473.
40
Villanueva A., Vioque J., Sánchez-Vioque R., Clemente A., Bautista J. and Millán F., 1999.Production of an extensive sunflower protein hydrolysate by sequential hydrolysis with endo- and exo-proteases. Grasas Aceites, 50 (6): 472–476.
41
Wang H., Johnson L.A. and Wang T., 2004. Preparation of Soy Protein Concentrate and Isolate from Extruded-Expelled Soybean Meals JAOCS, 81 (7): 719-717.
42
Xue M., Wu X., Ren Z., Gao P., Yu N. and Pearl G., 2006. Effects of six alternative lipid sources on growth and tissue fatty acid composition in Japanese sea bass (Lateolabrax Japanicus), Aquaculture, 206: 206-214.
43
Xu Q.Y., Wang C.A., Zhao Z.G. and Luo L., 2012. Effects of replacement of fish meal by soy protein isolate on the growth, digestive enzyme activity and serum biochemical parametersfor juvenile Amur sturgeon (Acipenser schrenckii). Asian-Australas. Journal of Animal Science, 25 (11): 1588–1594.
44
Yamamoto M. and Ikenaka T., 1967. Studies on soybean trypsin inhibitors I. Purification and characterization of two soybean trypsin inhibitors. Journal of Biochemistry, 62 (2): 141–149.
45
Yang Y.H., Wang Y.Y., Lu Y. and Li Q.Z., 2011. Effect of replacing fish meal with soybeanmeal on growth, feed utilization and nitrogen and phosphorus excretion on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture International, 19 (3): 405–419.
46
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر سطوح مختلف ویتامین C و ویتامین E در جیره بر پارامترهای رشد و سیستم ایمنی ماهی آزاد دریای خزر
پژوهش حاضر با هدف بررسی اهمیت سطوح مختلف ویتامین C و ویتامین E در جیره ماهی آزاد دریای خزر طراحی گردید. در این بررسی اثر مقادیر مختلف ویتامین های C و E در جیره بر فاکتورهای هماتولوژی و رشد بچه ماهی آزاد دریای خزر مورد مطالعه قرار گرفت. بچه ماهیان آزاد دریای خزر با وزن متوسط (±SD) 24/0±35 گرم با جیره غذایی اکسترود رشد 2 (EX-TG2) و سطوح مختلفی از ویتامین C و ویتامین E به صورت همزمان مورد تغذیه قرار گرفتند. تیمارهای مختلف 1 تا 10 مورد استفاده به ترتیب شامل مقادیر 100 و 200 و 300 میلیگرم بر کیلوگرم ویتامین C و مقادیر 20 و 30 و 40 میلیگرم بر کیلوگرم ویتامین E بودند. غذای مورد استفاده در تیمار 10 نیز به عنوان شاهد فاقد ویتامین بود. غذا دهی روزانه به میزان 3% وزن بدن و 3 بار در روز انجام پذیرفت. به جهت بررسی بر هم کنش احتمالی دو ماده غذایی در جیره ها از دو ویتامین C و E همزمان استفاده گردید. نتایج نشان داد که بین تیمارهای مورد بررسی از نظر افزایش وزن بدن و درصد بازماندگی ماهیان اختلاف معنی دار آماری مشاهده می گردد. همچنین نتایج بررسی نشان داد که در بین تیمارهای مختلف ویتامین C و E، ماهیان سه تیمار(9و8و7) که با غذای حاوی ویتامین C و ویتامین E بترتیب به مقدار بالا تر ویتامین C یعنی (40-300)، (30-300) و (20-300) (mg/kg) تغذیه شده بودند، بیشترین افزایش وزن بدن و درصد بازماندگی را بدست آوردند و ماهیان تیمار(10) که با غذای فاقد ویتامین تغذیه شدند نیز، کمترین افزایش وزن بدن و درصد بازماندگی را داشتند. بالاترین FCR (ضریب تبدیل) متعلق به تیمار 10 (بدون ویتامین) بوده است. همچنین نتایج نشان داد که بین گروههای تیماری مختلف در این بررسی اختلاف معنی دار آماری در فاکتورها خونی نظیر:گلبولهای قرمز، گلبول سفید، هموگلوبین، نوتروفیل و لنفوسیت وجود دارد. بیشترین میزان گلبول سفید و نوتروفیل در تیمار (9و8و7) ، بیشترین میزان هموگلوبین در تیمار(9و8) بود. لنفویست ومنوسیت در بین گروههای مورد بررسی تغییر چندانی نداشت و حداکثر مقدار لیزوزیم متعلق به تیمار(5) بود. ایمنوگلوبولین کل نیز به عنوان یک شاخص ایمنی عمومی در سه تیمار 7و8و9 در بالاترین حد خود قرار داشت. به طور کلی نتایج این بررسی نشان داد که بهترین دوز مناسب ویتامینC و ویتامین Eبرای بچه ماهیان آزاد دریای خزر بترتیب 300 میلیگرم بر کیلوگرم و 30 میلیگرم بر کیلوگرم در غذا بود. همچنین نتایج نشان داد که میان این دو ویتامین در جیره بر هم کنش مثبت وجود داشت.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103171_a68f2ed5dae8f374ebc3f6602d40e2d6.pdf
2015-02-20
85
96
10.22092/isfj.2015.103171
ماهی آزاد دریای خزر
ویتامین سی
ویتامین ای
شاخصهای خونی
شاخصهای ایمنی
محمود
صیاد بورانی
1
AUTHOR
حسین
خارا
h.khara1974@yahoo.com
2
LEAD_AUTHOR
محمد
صیادبورانی
3
AUTHOR
سید محمد اسماعیل
فخارزاده
4
AUTHOR
افشار مازندران، ن.، 1381. راهنمای علمی تغذیه و نهاده های غذایی و دارویی آبزیان در ایران.چاپ سما رنگ. چاپ اول.216صفحه.
1
بیسواس، اچ.پی.، 1383. مبانی زیست شناسی ماهی، ترجمه افشین عادلی، انتشارات نقش مهر. 176صفحه.
2
حقیقی، م.، 1388. روشهای آزمایشگاهی خون شناسی ماهی، انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 84صفحه.
3
سالک یوسفی، م.، 1379. تغذیه آبزیان پرورشی (ماهیان سرد آبی، ماهیان گرم آبی و میگو). چاپ موسسه تبلیغاتی عاطفه. چاپ اول. 319صفحه.
4
عبدالملکی، ش. و صیادبورانی، م.، 1383. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر در سال 83-1382. مرکز تحقیقات ماهیان استخوانی دریای خزر.بندرانزلی. 113صفحه.
5
غنی نژاد، د.؛ مقیم، م.؛ عبدالملکی ش. و صیادبورانی، م.، 1381. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزردر سال 79-80. پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی کشور.بندرانزلی . 98صفحه .
6
فراهانی،ر.، 1383. راهنمای پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان.انتشارات نقش مهر.چاپ اول.158صفحه.
7
فلاحتکار، ب.؛ سلطانی، م.؛ ابطحی،ب.؛ کلباسی، م.؛ پورکاظمی، م. و یاسمی، م.، 1385. تأثیر ویتامینC بر برخی پارامترهای رشد، نرخ بازماندگی و شاخص کبدی در فیل ماهیان( Huso huso) جوان پرورشی. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. 103-98 ، 72. کازانچف، ا.ان.، 1371. ماهیان دریای خزر و حوضه آبریز آن، ترجمه ابوالقایم شریعتی، انتشارات شرکت سهامی شیلات ایران. 171صفحه. وثوقی، غ. و مستجیر، ب.، 1381. ماهیان آب شیرین. مؤسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 317 صفحه.
8
Adeli, A., Baghaei, F., 2013. Production and Supply of Rainbow Trout in Iran and the world. World. 5, 335-341.
9
Dabrowski, K. and Ciereszko, A., 2001. Ascorbic acid and reproduction in fish: Endocrine regulation and gamete quality. Aquaculture Research, 32, 623-638.
10
de Menezes, G.C., Tavares-Dias, M., Ono, E.A., de Andrade, J.I.A., Brasil, E.M., Roubach, R., Urbinati, E.C., Marcon, J.L. and Affonso, E.G., 2006. The influence of dietary vitamin C and E supplementation on the physiological response of pirarucu, Arapaima gigas, in net culture. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 145, 274-279.
11
Halver, J.E., 1957. Nutrition of Salmonoid fishes III. Water-soluble vitamin requirements of chinook salmon. The Journal of Nutrition, 62, 225-243.
12
Halver, J.E., 1980. Vitamin requirements of finfish [Deficiency symptoms]. Nutrition and food science; present knowledge and utilization 2.
13
Hardie, E., Page, R., Williams, P. and Fischer, W., 1991. Effect of time of cisplatin administration on its toxicity and pharmacokinetics in dogs. American journal of veterinary research, 52, 1821.
14
Iwama, G.K., McGeer, J.C. and Pawluk, M.P., 1989. The effects of five fish anaesthetics on acid-base balance, hematocrit, blood gases, cortisol, and adrenaline in rainbow trout. Canadian Journal of Zoology, 67, 2065-2073.
15
Jeney, G., Jeney, Z., 2002. Application of immunostimulants for modulation of the non‐specific defense mechanisms in sturgeon hybrid: Acipenser ruthenus× A. baerii. Journal of Applied Ichthyology 18, 416-419.
16
Kiron, V., 2012. Fish immune system and its nutritional modulation for preventive health care. Animal Feed Science and Technology 173, 111-133.
17
Silva, B.C., Martins, M.L., Jatobá, A., Buglione Neto, C.C., Vieira, F.N., Pereira, G.V., Jerônimo, G.T., Seiffert, W.Q., Mouriño, J.L.P., 2009. Hematological and immunological responses of Nile tilapia after polyvalent vaccine administration by different routes. Pesquisa Veterinária Brasileira 29, 874-880.
18
Smith, C.E., Halver, J.E., 1969. Folic acid anemia in coho salmon. Journal of the Fisheries Board of Canada 26, 111-114.
19
Traber, M.G., Atkinson, J., 2007. Vitamin E, antioxidant and nothing more. Free Radical Biology and Medicine 43, 4-15.
20
Treves-Brown, K., 2000. Methods of drug administration. Applied Fish Pharmacology. Springer, pp. 1-15.
21
Vajdovich, P., 2011. Studies on veterinary medicine. Springer.
22
Verlhac, V., Obach, A., Gabaudan, J., SCHÜEP, W., HOLE, R., 1998. Immunomodulation by dietary vitamin C and glucan in rainbow trout (< i> Oncorhynchus mykiss</i>). Fish & Shellfish Immunology 8, 409-424.
23
Wahli, T., Verlhac, V., Gabaudan, J., Schuep, W., Meier, W., 1998. Influence of combined vitamins C and E on non-specific immunity and disease resistance of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish diseases, 21, 127-138
24
Wise, D., Tomasso, J., Gatlin III, D., Bai, S., Blazer, V., 1993. Effects of dietary
25
selenium and vitamin E on red blood cell peroxidation, glutathione peroxidase activity, and macrophage superoxide anion production in channel catfish. Journal of Aquatic Animal Health, 5, 177-182.
26
Yildirim‐Aksoy, M., Lim, C., Li, M.H. and Klesius, P.H., 2008. Interaction between dietary levels of vitamins C and E on growth and immune responses in channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque). Aquaculture Research, 39, 1198-1209.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیر سطوح مختلف آرد آزولا در جیره غذایی بر عملکرد رشد و قابلیّت هضم ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)
در این مطالعه اثر سطوح مختلف آرد آزولا در جیره غذایی بر عملکرد رشد و قابلیت هضم ظاهری بچّه ماهیان انگشت قد کپور معمولی در طول مدّت 60 روز بررسی شد. پنج جیره های آزمایشی با مقادیر پروتئین (30%) و چربی (10%) یکسان و حاوی سطوح مختلف آرد آزولا (0، 15، 25، 35 و 45 درصد از کل جیره) فرمول بندی شدند. تحقیق در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار برای هر تیمار روی بچه ماهیان انگشت قد با وزن 2/0± 5/16 گرم انجام شد. 20 قطعه بچه ماهی به هر تکرار اختصاص یافت و در تانک های 300 لیتری ذخیره سازی شدند. نتایج نشان داد که استفاده از آرد آزولا در جیره غذایی کپور معمولی تا سطح 15 درصد، تأثیر منفی بر عملکرد رشد بچه ماهیان نداشت، ولی رشد بچه ماهیان با افزایش سطح آزولا به بیش از 15 درصد، به طور معنی داری کاهش یافت. بر اساس نتایج با افزایش سطح آزولا در جیره میزان قابلیت هضم ظاهری ماده خشک کاهش معنی داری یافت. بالاترین قابلیت هضم ظاهری پروتئین در تیمار شاهد مشاهده شد. با این حال بین تیمار 2 (حاوی 15 درصد آزولا) و شاهد (بدون آزولا) از لحاظ قابلیت هضم ظاهری پروتئین اختلاف معنی داری مشاهده نشد. در مجموع نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که از آرد آزولا می توان تا سطح 15 درصد در جیره غذایی ماهی کپور معمولی استفاده نمود.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103172_dd9cb231d1bc9891315cf70907aa2823.pdf
2015-02-20
97
104
10.22092/isfj.2015.103172
کپور معمولی
آرد آزولا
عملکرد رشد
قابلیت هضم پذیری
حسین
اورجی
hoseinoraji@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.cm
2
AUTHOR
خسرو
جانی خلیلی
janikhalili1@yahoo.com
3
AUTHOR
فریبا
داداشی
4
AUTHOR
عبدالصمد
کرامت
5
AUTHOR
کوثر
کمالی
6
AUTHOR
فضائلی، ح.، محمدیان تبریزی، ح.م.، قربانی، ا.، اسدپور، ی. و افضلی، م.، 1387. اثر جیره های حاوی آزولای (Azolla filiculoides) سیلو شده با تفاله خشک چغندر قند بر عملکرد پرواری گوساله های نر بومی گیلان. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی، جلد پانزده هم ، شماره چهار،
1
AOAC (Association of Official Analytical Chemists), 1995. Official methods of analysis.16th edition. AOAC, Arlington, Virginia.
2
Abdel-Rahman, M.H.M., Shanab, S.M.M., Shabana, E.F., Shaalan, S.N. and Abdel-Tawwab, M., 2002. Azolla performance and the effect of its natural cover on water quality and phytoplankton abundance in Abbassa area, Sharkia Governorate. Egyptian Journal of Biotechnology, 11, 365-383.
3
Abdel-Tawwab, M., 2008. The preference of the Omnivorous- Macrophagous, Tilapia zillii (Gervais), to consume a natural free-floating Fern, Azolla pinnata. Journal of the World Aquaculture Society, 39, 104-112.
4
Buckingham, K.W., Ela, S.W., Morris, J.G. and Goldman, C.R., 1978. Nutrition value of nitrogen-fixing aquatic fern Azolla filiculoides. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 26, 1230-1234.
5
Caffrey, J.M., Barrett, P.R.F., Ferreira, M.T., Moreira, I.S., Murphy, M.P. and Wade, P.M., 1999. Biomass characterization of Azolla filiculoides grown in natural ecosystems and waste water. Hydrobiology, 415, 323–327.
6
Cole, D.J. and Van Lunen, T.A., 1994. Ideal amino acid patterns. Amino acids in farm animal nutrition. The Scottish Agricultural College. Edinburgh, UK, pp. 99-112.
7
Cowey, C.B., 1992. Nutrition: Estimation requirements of Rainbow trout. Aquaculture, 100: 177-189.
8
Datta, S.N., 2011. Culture of Azolla and its efficiency in diet of Labeo rohita. Aquaculture, 310, 376-379.
9
Desilva, S.S. and Anderson, T.A., 1995. Fish nutrition in aquaculture. Chapman and Hall, London, 319P.
10
Ebrahim, M.S.M., Zeinhom, M.M. and Abou-Seif, R.A., 2007. Response of Nile Tilapia (Oreochromis Niloticus) fingerlings to diets containing Azolla meal as a source of Protein. Journal of the World Aquaculture Society, 2, 54-68.
11
El-Sayed, A.F.M., 1992. Effect of substituting fish meal with Azolla pinnata in practical diets for fingerling and adult tilapia Oreochromis niloticus (L.). Aquaculture and Fisheries Management, 23, 167-173.
12
Fasakin, A.E. and Balogun, A.M. 1998. Evaluation of dried water fern (Azolla pinnata) as replacer for soybean dietary components for Clarias gariepinus fingerlings. Journal of Aquaculture in the Tropics, 13(1), 57-64.
13
Fiogbe, E.D., Micha, J.C. and Van Hove, C., 2004. Use of a natural aquatic fern, Azolla microphylla, as a main component in food for the omnivores-phytoplanltonphagous, Oreochromis niloticus L. Journal of Applied Ichthyology, 20, 517-520.
14
Furukawa, A. and Tsukahara, H., 1966. On the acid digestion method for the determination of chromic acid as an index substance in the study of digestibility of fish feed. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries, 32, 502-506.
15
Li, Z., Lue, X., Xu, T.and Jiang, Y., 1991. Ecological techniques on broad water body and effects of Azolla raising and its application. Chinese Journal of Applied Ecology, 2, 113-120.
16
Van Hove, C., 1989. Azolla and its multiple uses with emphasis on Africa. Food and Agriculture Organization. Rome, Italy.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بکارگیری دو گونه از پروبیوتیکهای باسیلوسی بر پاسخهای ایمنی و فلور میکروبی روده پستلارو میگوی پا سفید غربی Litopenaeus vannamei (Boone, 1931)
در مطالعه حاضر تأثیر مصرف جیرههای حاوی Bacillus subtilis و B. licheniformis در سه قالب تجاری، تجاری- بومی و بومی بر روی برخی شاخصهای ایمنی (گلوکز، آلبومین، پروتئین کل، لیزوزیم، کورتیزول، ایمونوگلوبولین M (IgM) و فلور میکروبی روده پستلارو میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei) ارزیابی شد. میگوها در طول دوره آزمایش (60 روز) با چهار جیره متفاوت تغذیه شدند: شاهد (بدون پروبیوتیک)، جیره T1 مکمل شده با 106×5/1 CFU g-1 از پروبیوتیک تجاری، جیره T2 با 106×5/1 CFU g-1 از پروبیوتیک تجاری- بومی، جیره T3 با 106×5/1 CFU g-1 از پروبیوتیک بومی. در پایان دوره آزمایش، سطوح پارامترهای بیوشیمیایی (گلوکز، پروتئین کل، لیزوزیم، کورتیزول، IgM) در میگوهای تغذیه شده با جیرههای حاوی پروبیوتیک بطور معنیداری نسبت به میگوهای تغذیه شده با جیره شاهد بیشتر بود. با این وجود، اختلاف معنیداری در غلظت آلبومین بین تیمارهای آزمایشی و شاهد مشاهده نشد، اما پس از 60 روز تغذیه با جیرههای T1، T2 و T3 (به ترتیب 19/1، 15/1 و 14/1) مقدار آن افزایش یافت. همچنین تراکم جمعیت باکتریهای باسیلوس شمارش شده در دستگاه گوارش میگوهای تغذیه شده با پروبیوتیک بطور معنیداری نسبت به شاهد بیشتر بود. نتایج این مطالعه نشان داد که افزودن پروبیوتیکهای باسیلی میتواند موجب بهبود پارامترهای ایمنی و تعدیل فلور میکروبی روده پستلارو میگوی سفید غربی گردد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110177_57a8216b54e7827cd9e9387f029b15a0.pdf
2015-02-20
105
117
10.22092/isfj.2017.110177
میگوی سفید غربی
پروبیوتیک
باسیلوس سابتیلیس
باسیلوس لیچنیفورمیس
ایمنی
داریوش
عبداللهی آرپناهی
dabdollahi8@gmail.com
1
LEAD_AUTHOR
حجتالله
جعفریان
2
AUTHOR
مهدی
سلطانی
3
AUTHOR
حُسنی
قلیپور کنعانی
4
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
آنالیز دی آلل کراس برخی صفات مرتبط با رشد و امید به زندگی در ماهیان زینتی (Puntius tetrazona)
آمیزش بین گونهای بطور گستردهای برای تولید دورگههای با صفات برتر در حیوانات آبزی مورد استفاده قرار میگیرد. در این بررسی توارث مادری، توانایی ترکیب عمومی و اختصاصی، هتروزیس و افت بواسطه همخونی (افزایش همتباری) در صفات مرتبط با رشد شامل سرعت رشد بدن بر حسب گرم در روز، سرعت افزایش طول بر حسب میلیمتر در روز، وزن بدن بر حسب گرم، طول و عرض بدن بر حسب میلیمتر و همچنین درصد تلفات در قالب طرح دی آلل کراس کامل در نتاج خالص و دورگههای حاصل از سه گونه تایگر و دو هیبرید آن شامل گرین و آلبینو بارب بررسی گردید. نتایج نشان داد بالاترین میزان توارث مادری در صفات مذکور مربوط به هیبرید آلبینو بوده و این هیبرید به عنوان لاین مادری بهترین عملکرد را نسبت به دو گونه تاریگر و هیبرید گرین بارب دارا است. میزان توانایی ترکیب عمومی گرین بارب در سه صفت (وزن، طول و عرض بدن) و در دو صفت سرعت رشد بدن و سرعت افزایش طول (تغییر طول) بدن هیبرید آلبینو عملکرد بالاتری نشان داد. مقایسه میزان توانایی ترکیبی خاص نشان دهنده برتری ژنتیکی هیبرید آلبینو هم به عنوان لاین پدری و هم به عنوان والد مادری در ترکیب با دو گونه تایگر و هیبرید گرین بارب بود. در بررسی مربوط به میزان هتروزیس، مقدار آن برای چهار صفت سرعت افزایش طول، وزن بدن، طول و عرض ماهیان منفی برآورد شد، اما میزان آن در دو صفت سرعت رشد بدن و درصد تلفات مثبت بودند که نشان دهنده فاصله ژنتیکی زیاد والدین در دو صفت مذکور میباشد. میزان افت بواسطه همخونی (افزایش همتباری) نیز بیشترین میزان آن مربوط به صفت طول بدن و کمترین میزان آن در بین صفات رشد مربوط به سرعت رشد بدن برآورد شد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103174_076cc3feec666cd4bca4839215e863b9.pdf
2015-02-20
119
136
10.22092/isfj.2015.103174
دی آلل کراس
ماهی زینتی
توانایی ترکیب عمومی
توانایی ترکیبی خاص
هتروزیس
حسین
اکبری
1
AUTHOR
غلامرضا
داشاب
dashab@uoz.ac.ir
2
LEAD_AUTHOR
دهقانی، ح؛ ترابی، م؛ مقدم، م. و قنادها، م.، 1384. تجزیه بای پلات دادههای تلاقی دی آلل تیپ آلودگی زنگ زرد گندم. نهال و بذر 21: 123- 138.
1
فالکونر.، 1373. آشنایی با ژنتیک کمی. ترجمه مصطفی ولی زاده و محمد مقدم. چاپ اول. انتشارات دانشگاهی تهران.
2
منتجمی، س؛ ذوالفقاری شارک، ا؛ منتجمی، س. و طاهری، ا.، 1390. آکواریوم و ماهیان آکواریومی آب شیرین. تهران: انتشارات آموزش و ترویج کشاورزی، 208-206.
3
Andrews C., 1990. The ornamental fish trade and fish conservation. Journal of Fish Biology, 37 :53-59.
4
Allendorf B.A., Laery R.F., Spruell P., Wenburg J.K., 2001. The problems with hybrids: Setting conservation guidelines. Trends in ecology and evolution, 16: 613-622.
5
Bartley D.M., Rana K., Immink A.J., 2001. The use of inter-specific hybrids in aquaculture and fisheries. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 10: 325-337.
6
Boswortahn B., Wolters D., 2004. Genetic effects for growth and resistance to Edwardsiella ictaluri estimated from a Diallel Cross among USDA-102 Strain Channel Catfish Zctalurus punctatus, Blue Catfish Zctalurus furcatus, and their F1 Hybrid. Journal of the World Aquaculture Society, 35(3): 420- 426.
7
Bryden C.A., Heath D.D., 2004. Performance and heterosis in farmed and wild Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) hybrid and purebred crosses. Aquaculture, 235: 249–261.
8
Cokerham C.C., 1963. Estimation of genetic variances. In: Hanson WD, Robinson HF (Eds), Statistical genetics and plant breeding. pp.53-94. NASNRCPublishing. 982 P.
9
Falconer D.S., Mackay T.F.C., 1996. Introduction to quantitative genetics, Fourth edition. Pearson Education, Ltd., Essex, UK 464 P.
10
Fishback A.G., Danzmann R.G., Ferguson M.M., Gibson J.P., 2002. Estimates of genetic parameters and genotype by environment interactions for growth traits of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) as inferred using molecular pedigrees. Aquaculture, 206: 137–150.
11
Froese R., Pauly D., 2011. Available from http://www.fishbase.org/Sum mary/speciesSummary.php?ID=4766&genusname=Puntius&speciesname=tetrazona& AT=Puntius+tetrazona&lang=English/
12
Gall G.A.E., Bakar Y., 2002. Application of mixed-model techniques to fish breed improvement: Analysis of breeding-value selection to increase 98-day body weight in tilapia. Aquaculture, 212: 93–113.
13
Gall G.A.E., Huang N., 1988. Heritability and selection schemes for rainbow trout: Body weight. Aquaculture, 73: 43–56.
14
Garcia de Leon F.J., Canonne M., Quillet E., Bonhomme F., Chatain B., 1998. The application of microsatellites markers to breeding programmes in the sea bass Dicentrarchus labrax. Aquaculture, 159: 303–316.
15
Gardner C.O., Eberhart S.A., 1966. Analysis and interpretation of the varity cross diallel and related populations. Biometerics, 22: 439-4592.
16
Gjedrem T., 2005. Selection and breeding programs in aquaculture. Springer, The Netherlands, pp. 145–158.
17
Gjerde B., Maluwa A.O., 2006. Estimates of the strain additive, maternal and heterosis genetic effects for harvest body weight of an F2 generation of Oreochromis shiranus. Aquacalture, 259: 38-46.
18
Goyard E., Goarant C., Ansquer D., Brun P., de Decker S., Dufour R., Galinié C., Peignon J., Pham D., Vourey E., 2008. Cross breeding of different domesticated lines as a simple way for genetic improvement in small aquaculture industries: heterosis and inbreeding effects on growth and survival rates of the Pacific blue shrimp Penaeus (Litopenaeus) styrostris. Aquaculture, 278: 43–50.
19
Griffing B., 1956. Concept of general and specific combining ability in relation to diallel crossing system. Australian Journal of Biological Sciences, 9: 463-493.
20
Hamzah A., Ponzoni R., Nguyen N.H., Khaw H.L., Kamaruzzaman N., Abubakar K.R., Yee, H.Y., 2008. Genetic improvement of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) – Present and future. 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture. Pp. 33-52.
21
Hardy R., 2003. Introduction to the special issue on ‘Ornamental fish’. Aquaculture Research, 34, 903.
22
Hayman B.I., 1954. The analysis of variance of diallel tables. Biometerics, 10: 235-244.
23
Herbinger C.M., Doyle R.W., Pitman E.R., Paquet D., Mesa K.A., Morris D.B., Wright J.M., Cook D., 1995. DNA fingerprinting based analysis of paternal and maternal effects on offspring growth and survival in communally reared rainbow trout. Aquaculture, 137: 245–256.
24
Jinks J.L., 1954. The analysis of heritable variation in diallel cross of Nicotiana rustica varieties. Genetics, 39: 767-788.
25
Kempthorne O., 1956. The theory of diallel cross. 41: 451-459.
26
Larkin S.L., 2003. The U.S. wholesale marine ornamental market: Trade, landings, and market opinions. Marine Ornamental Species: Collection, Culture and Conservation,Pp.77-89.
27
Lee J., Kaltsikes P.J., 1972. Supplemental information on the use of computer program for the Jinks-Hyman diallel analysis of data from F1, F2 and F3 generations. Crop Science, 12: 633.
28
Li K., Chang O., Wang F., Liu C.H., Liang H., Wu S.H., 2012. Ultrastructure, development, and molecular phylogeny of Pleistophora hyphessobryconis, a broad host microsporidian parasite of Puntius tetrazona. Parasitol Research, 111: 1715–1724.
29
Luo W., Zeng C., Yi S.H., Robinson N., Wang W., Gao Z., 2014. Heterosis and combining ability evaluation for growth traits of blunt snout bream (Megalobrama amblycephala) when crossbreeding three strains. Chinese Scientific Bulletin, 59(9): 857–864.
30
Maluwa A.O., Gjerde B., 2006. Genetic evaluation of four strains of Oreochromis shiranus for harvest body weight in a diallel cross. Aquaculture, 259: 28–37.
31
Nukwan S., Tangtrongpiros M., Lawanyawut K., Veerasidth P., 1990. Cross breeding between Clarias macrocephalus and Clarias gariepinus. Proceedings of the 28th Kasetsart University Conference, Fisheries Section, Bangkok. 29–31 January 1990. Pp. 553–567.
32
Parsad R., 2000. Use of nested designs in diallel cross experiments. I.A.S.R.I., Library Avenue, New Delhi- 110012. Pp. 305-326.
33
Pelicice F.M., Agostinho A.A., 2005. Perspectives on ornamental fisheries in the upper Paran´a River floodplain, Brazil. Fisheries Research, 72: 109–119.
34
Pethiyagoda R., Meegaskumbura M., Maduwage K., 2012. A synopsis of the South Asian fishes referred to Puntius (Pisces: Cyprinidae). Ichthyology Exploration Freshwater, 23(1): 69- 95.
35
Prang G., 2007. An industry analysis of the freshwater ornamental fishery with particular reference to the supply of Brazilian freshwater ornamentals to the UK market. Uakari, 3: 7–51.
36
Saillant E., Dupont-Nivet M., Haffray P., Chatain B., 2006. Estimates of heritability and genotype–environment interactions for body weight in sea bass (Dicentrarchus labrax L.) raised under communal rearing conditions. Aquaculture, 254: 139–147.
37
Scheerer P.D., Thorgaard G.H., 1983. Increased survival in salmonid hybrids by induced triploidy. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 40: 2040-2044.
38
Shahreza M.S., Asma A.N., Patimah S.G., 1998. Genetic differences of tiger barb (Puntius tetrazona ) in Perak population using random amplified polymorphic DNA markers. Proceedings of the Tenth National Biotechnology Seminar. Pp. 291-294.
39
Sprague G.F., Tatum L.A., 1942. General versus specific combining ability in single crosses of corn. Journal of American Society of Agronomy, 34: 923-932.
40
Su S.H., Xu P., Yuan X.I., 2013. Estimates of combining ability and heterosis for growth traits in a full diallel cross of three strains of common carp, Cyprinus carpio L. African Journal of Biotechnology, 12(22): 3514-3521.
41
Vandeputte M., Kocour M., Mauger S., Dupont-Nivet M., De Guerry D., Rodina M., Gela D., Vallod D., Chevassus B., Linhart O., 2004. Heritability estimates for growth-related traits using microsatellite parentage assignment in juvenile common Carp (Cyprinus carpio L.). Aquaculture, 235: 223–236.
42
Walter D.E., Morton J.R., 1978. On the analysis of variance of half diallel table. Biometerics, 34: 91-94.
43
Wangila B.C.C., Dick T.A., 1996. Genetic effects and growth performance in pure and hybrid strains of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture Research, 27: 35–41.
44
ORIGINAL_ARTICLE
یافته کوتاه: بررسی شاخص تراکم و اندازه طولی صدف های مرواریدساز محار Pinctada radiata در دو زیستگاه در اطراف جزیره هندورابی (ایران، خلیج فارس)
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110178_23f6d0fd214c6855fa4ecaaec6a4e95c.pdf
2015-02-20
137
145
10.22092/isfj.2017.110178
صدف مرواریدساز محار Pinctada radiata
شاخص تراکم
اندازه طولی
جزیره هندورابی
محمد
موحدی نیا
momnia64@gmail.com
1
LEAD_AUTHOR
حسین
رامشی
hrameshi@yahoo.com
2
AUTHOR
شهرام
صیدمرادی
3
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
4
AUTHOR
عبدالله
اسماعیل زاده
5
AUTHOR
غلامرضا
ارگنجی
6
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
یافته کوتاه:تأثیر جایگزینی پودر ماهی با سطوح مختلف پودر نخود پرتودهی شده و بدون پرتودهی در جیره غذایی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) بر شاخص های رشد و هورمون های تیروئیدی (T3 و T4)
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110179_d09d582a4dd8ccebbf6b6ce54c69f79e.pdf
2015-02-20
147
152
10.22092/isfj.2017.110179
Oncorhynchus mykiss
نخود
پرتودهی
رشد
هورمون های تیروئیدی (T3 و T4)
رقیه
رضامند
srezamand@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
رضا
عسگری
2
AUTHOR