ORIGINAL_ARTICLE
بررسی عوامل تعیینکننده در انتخاب پذیری و ترجیح زیستگاه سیاه ماهی Capoeta capoeta gracilis (Keyserling 1891) در رودخانه سیاهرود (از سرشاخههای حوضه رودخانه سفیدرود)
به منظور بهرهبرداری پایدار و حفظ تنوع زیستی اکوسیتمهای رودخانهای، شناخت نیازهای زیستی آبزیان امری ضروری است و ترجیح زیستگاه یکی از مهمترین عوامل مدیریتی برای جمعیت ماهیان میباشد. رودخانۀ سیاهرود از جمله رودهای فرعی منتهی به رودخانه سفیدرود در حوضۀ خزر است که از رشته کوههای البرز سرچشمه میگیرد و از جمله مکان های پراکنش سیاهماهی(Capoeta capoeta gracilis)، یکی از ماهیان بومی و گونۀ غالب این حوضه میباشد. نیازهای زیستی سیاه ماهی، با نمونهبرداری از 13 ایستگاه و با سه تکرار در مهر و آبانماه سال 1392 بررسی شد. برای این منظور ویژگیهای هیدرولوژیک رودخانه شامل سرعت آب، عمق، عرض رودخانه، نوع بستر، شیب، ارتفاع از سطح دریا و نوع پوشش گیاهی در هر ایستگاه ثبت گردید. محدوده مورد استفاده و محدوده زیستگاه انتخابی با توجه به میزان در دسترس بودن هر واحد زیستگاهی برای متغیرهای مختلف از طریق نرمافزار HABSEL بدست آمد. نتایج حاصل از رگرسیون چندتایی با وجود همبستگی معنادار میان سرعت و عمق نشان داد ترجیح رفتاری در محدوده عمقهای 17تا 38 سانتیمتری میباشد و در عمقهای زیاد و خیلی کم کاهش پیدا میکرد. سیاهماهی محدوده زیادی از سرعت آب بین 44/0 تا 56/0 متر بر ثانیه را انتخاب کرده و بیشتر بستر سنگلاخی را برای زیستن ترجیح میدهد. بنابراین برخی فعالیتهای انسانی که در رودخانه توتکابن در حال انجام است سبب تغییر در ویژگیهای محیطی مانند عرض، عمق، سرعت جریان و بستر رودخانه میشود، ممکن است پراکنش سیاهماهی را در این رودخانه تحت تاثیر قرار بدهد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103536_132e48ab093ddfb72be170bdb766db08.pdf
2014-09-23
1
10
10.22092/isfj.2014.103536
سیاهماهی(C. capoeta gracilis)
متغیرهای محیطی
زیستگاه
رودخانه سیاهرود
هادی
اسدی
asadi.shil@gmail.com
1
LEAD_AUTHOR
مسعود
ستاری
msattari@guilan.ac.ir
2
AUTHOR
سهیل
ایگدری
soheil.eagderi@yahoo.com
3
AUTHOR
حسنلی ع.م.، 1379. روشهای گوناگون اندازهگیری آب (هیدرومتری). انتشارات دانشگاه شیراز. 265صفحه.
1
سازمان جغرافیایی نیروهای مسلح، 1383. فرهنگ جغرافیایی رودهای کشور، حوزه آبریز ایران مرکزی. انتشارات سازمان جغرافیایی نیروهای مسلح. جلد سوم، 279صفحه.
2
عبدلی ا. و نادری م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان، 242 صفحه.
3
طباطبایی س. ن .، 1392. بررسی عوامل محیطی بزرگ مقیاس موثر بر پراکنش سگ ماهی جویباری (Oxynoemacheilus bergianus) در رودخانۀ کردان. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تهران. 69صفحه.
4
لطفی ا.، 1391. راهنمای ارزیابی سریع خصوصیات زیست محیطی رودخانهها. انتشارات قلم آذین، 251صفحه.
5
Ahmadi-Nedushan B., ST-Hilare A., Berube M., Robichaud E., Thiemonge N. and Bobeea B. 2006. A review of statistical methods for the evaluation of aquatic habitat suitability for instream flow assessment. River Research and Applications, 22, 503-523.
6
Bovee K.D., 1982. A guide to stream habitat analysis using the instream flow incremental methodology. Washington, DC: U.S. Fish and Wildlife Service. FWS/OBS-82/26.
7
Coad B., 2013. Fresh water fishes of Iran. Available from www.Briancoad.com. Accessed 1st Jun 2013
8
Consulting J., 2014. Available: www. Jowett consulting.co.nz. Accessed 2/3/2014.
9
Copp G.H. and Vilizzi L., 2004. Spatial and ontogenetic variability in the microhabitat use of stream-dwelling spined loach (Cobitis taenia) and stone loach (Barbatula barbatula). Journal of Applied Ichthyology, 20(6), 440-451.
10
Guay J.C, Boisclair D., Rioux D., Leclerc M., Lapointe M. and Legendre P., 2000. Development and validation of numerical habitat models for juveniles of Atlantic salmon (Salmo salar). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 57, 2065-2075.
11
Johnston N.T. and Slaney P.A., 2006. Fish habitat assessment procedures. Watershed Restoration Technical Circular No. 8.
12
Jowett I.G., Parkyn S.M. and Richardson J., 2007. Habitat characteristics of crayfish (Paranephoves Planifrons) in New Zeeland streams using generalized additive models (GAMs). Hydrobiologia, 101, 107-118.
13
Oberdorff T., Pont D., Hugueny B. and Chessel D., 2001. A probabilistic model characterizing fish assemblages of French rivers: A framework for environmental assessment. Freshwater Biology, 46, 399–415.
14
Orth M., 1988. Use of habitat guilds of fishes to determine in stream flow requirements. North American Journal of Fisheries Management, 8, 399-409.
15
Palialexis A., Georgakarakos S., Karakassia L., Lika K. and Valavanis V.D., 2011. Prediction of marine species distribution from presence–absence acoustic data: comparing the fitting efficiency and the predictive capacity of conventional and novel distribution models. Hydrobiologia, 670, 241-266.
16
Pati A.K. and Agrawal A., 2002. Studies on the behavioral ecology and physiology of a hypogean loach, Nemacheilus evezardi, from the Kotumsar Cave, India. Current Science, 83(9), 1112-1116.
17
Rosenfeld J., 2003. Assessing the habitat requirement of stream fishes: An overview and evaluation of different approaches. Transaction of the American Fisheries Society, 132, 953-968.
18
SAS Institute., 2002. SAS Users Guide: Statistics. Vers. 5 ed. Cary, NC: SAS Institute Press.
19
Sheppard J.D. and Johnson J.H., 1985. Probability-of-use for depth, velocity and substrate by subyearling coho salmon and steelhead in Lake Ontario tributary streams. North American Journal of Fisheries management, 5, 277-282.
20
Vinagre C., Fonseca V., Cabral H. and Costa M.J., 2006. Habitat suitability index models for the juvenile soles, Solea solea and Solea senegalensis, in the Tagus estuary: Defining variables for species management. Fisheries Research, 82, 140-149.
21
Waddle T.J., 2012. PHABSIM for Windows user's manual and exercises: U.S. Geological Survey Open-File Report 2001-340. 288P.
22
Yu S.L. and Lee T.W., 2002. Habitat preference of the stream fish, Sinogastromyzon puliensis (Homalopteridae). Zoological Studies. 41(2), 183-187.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر سیتوتوکسیک و ضد سرطانی دیواره بدن خیار دریایی گونه Holothuria leucospilota در شرایط آزمایشگاهی
در سالهای اخیر تلاشها بهمنظور یافتن مواد زیست فعال از جانداران بهخصوص جانوران دریایی افزایشیافته است. در طی این پژوهش اثر ضد سرطانی و سیتوتوکسیک دیواره بدن خیار دریایی گونه Holothuria leucospilota مورد بررسی قرار گرفت. برای این منظور خیارهای دریایی از عمق 10 الی 30 متری اطراف جزیره لارک جمعآوری و عصاره گیری از آنها با استفاده از حلال متانول و دی اتیل اتر انجام شد. عصارههای بهدستآمده پس از تغلیظ به وسیله دستگاه روتاری در دمای 40 درجه سانتیگراد، بهوسیله دستگاه وکیوم فریز درایر بهصورت پودر خشک درآمد و مورد بررسی قرار گرفت. بهمنظور بررسی اثر سیتوتوکسیک و ضد سرطانی دیواره بدن خیار دریایی از روش رنگ سنجی XTT استفاده شد. نتایج آزمایش نشان داد که عصاره متانولی استخراج شده در غلظتهای 100 و 500 میکروگرم بر میلیلیتر و عصاره دی اتیل اتری در غلظت 500 میکروگرم بر میلیلیتر توان ممانعت از تکثیر سلولهای سرطانی اپیدرمویید دهان انسان در محیط آزمایشگاهی را داشتند. همچنین این عصارهها دارای اثر سیتوتوکسیکی قویی بر روی سلولهای نرمال بودند. درمجموع دیواره بدن خیار دریایی دارای اثر سیتوتکسیک بسیار قوی بود و میتوان از آن به عنوان یک ماده سیتوتوکسیک یاد کرد. ولی این عصارهها ارزش درمانی قابل توجهای به منظور درمان سلولهای سرطان دهانی از خود نشان ندادند.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103537_e5ffa7ef660afe73b9239e011cf92551.pdf
2014-09-23
11
20
10.22092/isfj.2014.103537
خیار دریایی
دیواره بدن
عصاره متانولی
عصاره دی اتیل اتری
سیتوتوکسیک
ضد سرطان
سعید
بحرودی
s.bahroudi@gmail.com
1
LEAD_AUTHOR
محمد علی
نعمت الهی
2
AUTHOR
محمد رضا
آقا صادقی
3
AUTHOR
ملیکا
ناظمی
melikanazemi@yahoo.com
4
AUTHOR
بهادر
بهروز
5
AUTHOR
Althunibat O.Y., Hashim R.B., Taher M., Daud J.M., Ikeda M.A. and Zali B.I., 2009. In vitro antioxidant and anti proliferative activities of three Malaysian sea cucumber species.European Journal of Scientific Research, 37 (3): 376-387.
1
Atkinson J.C., Harvey K.E. and Domingo D.L., 2008. Oral and dental phenotype of dyskeratosis congenita. Oral Disease, 14: 419–427.
2
Bordbar S., Anwar F. and Saari N., 2011. High-value components and bioactives from sea cucumbers for functional foods. Marine Drugs, 9: 1761-1805.
3
Chludil, H.D. Murray, A.P. Seldes, A.M. and Maier, M.S., 2003.Biologically active triterpene glycosides from sea cucumbers (holothuroidea, echinodermata). Studies in natural products chemistry, 28 (Part I): 587-616.
4
Farouk A.A., Ghouse F.A.H. and Ridzwan B.H., 2007. New bacterial species isolated from Malaysian sea cucumbers with optimized secreted antibacterial activity. Americam Journal of Biochemistry and Biotehcnology, 3: 60-65.
5
Faulker J., 1996. Marine natural products. Natural Products, 13: 75- 125.
6
Hamel J.F. and Mercer A., 1996. Evidence of chemical communication during the Gametogenesis of Holothuroids. Ecology, 77 (5): 1600-1616.
7
Hua H., ling L., Yangyang-Hua Y., Xiao-Hua W. and Min-Xiang P., 2012. Tiriterpen glycosides from sea cucumber Holothuria scabra with cytotoxic activity. Chinese Herbal Medicines, 4(3): 183-188.
8
Kraljevic S., Sedic M., Scott M., Gehrig P., Schlapbach R. and Pavelic K., 2006. Casting light on molecular events underlying anti-cancer drug treatment: what can be seen from the proteomics point of view. Cancer Treatment Reviews, 32(8): 619-29.
9
Naik C.G., Kamat S.Y., Parameswaran P.S., Das B., Bhattacharya S., Ramani P., Bhakuni D.S., Goel A.K., Jain S. and Srimal R.C., 1989. Bioactivity of marine organisms. IV- Screening of some marine animals from the Indian Ocean.
10
Mahasagar - Bulletin National Institute of Oceanography, 22: 99-104.
11
Ogushi M., Yoshie-stark M. and Suzuki T., 2005. Cytostatic Activity of Hot Water Extracts from the Sea Cucumber in Caco-2. Food Science and Technology Research. 11(2): 202-206.
12
Ogushi M., Yoshie-stark M., and Suzuki T., 2006. Apoptosis-inducing Activity of HotWater Extracts from the Sea Cucumber in Human Colon Tumor Cells. Food Science and Technology Research, 12 (4): 290-294.
13
Patar A., Jamalullail S.M.S.S., Jaafar H. and Abdullah J.M., 2012. Analysis of sea cucumber body wall extracts from Perhentian stichopus variegatus species using gas chromatography mass spectrophotometry. European Journal of Scientific Research, 68(1): 54-59.
14
Rodriguez J., Castro R. and Riguera R., 1991. Holothurinosides: New anti-tumor non sulphated triterpenoid glycosides from the sea cucumber Holothruia forskalii. Tetrahedron, 47: 4753-4762.
15
Rodriguez T., Altieri A., Chatenoud L., Gallus S., Bosetti C., Negri E., Franceschi S., Levi F., Talamini R. and Vecchia C.L., 2004. Risk factors for oral and pharyngeal cancer in young adults. Oral Oncology, 40: 207–213.
16
Scudiero DA., Shoemaker RH., Paull KD., Monks A., Tierney S., Nofziger TH., Currens MJ., Seniff D. and Boyd MR., 1988. Evaluation of a soluble tetrazolium/formazan assay for cell growth and drug sensitivity in culture using human and other tumor cell lines. Cancer Res, 48(17):4827-33.
17
Sugawara T., Zaima N., Yamamoto A., Sakai S., Noguchi R. and Hirata T., 2006. Isolation of sphenoid bases of sea cucumber cerberosides and their cytotoxicity against human colon cancer cells. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 70: 2906–2912.
18
Tian F., Zhang X., Tong Y., Yi Y., Zhang S., Li L., Sun P., Lin L. and Ding J., 2005. A new sulfated saponin from sea cucumber, exhibits anti-angiogenic and anti-tumor activities in vitro and in vivo. Cancer Biology & Therapy, 4: 874-882.
19
Wen J., Hu C. and Fan S., 2010. Chemical composition and nutritional quality of sea cucumbers. Journal of the Science of Food and Agriculture, 90: 2469–2474.
20
Yaacob H.B., Kim K.H., Shahimi M., Aziz N.S. and Sahil S.M., 1997. Malaysian sea cucumber (Gamat): A prospect in health food and therapeutic. In: Proceeding of Asian Food Technology Seminar, Kuala Lumpur, Malaysia, 6 P.
21
Yang P., Collin P., Madden T., Chan D., Sweeney-Gotsch B., McConkey D. and Newman R.A., 2003. Inhibition of proliferation of PC3 cells by the branched-chain fatty acid, 12-methyltetradeca- noic acid, is associated with inhibition of 5-lipoxygenase. Prostate, 55: 281–291.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر سمیت مزمن علفکش آترازین (Atrazine) بر روند تجمعپذیری آن در فیلهی ماهی شیربت (Barbus grypus)
علفکش آترازین یکی از مهمترین آلایندههای اکوسیستمهای آبی است. یکی از بزرگترین مزارع نیشکر خاور میانه در استان خوزستان میباشد که این سم در مراحل کشت این گیاه به وفور مصرف میشود. لذا هدف این تحقیق در وهله اول محاسبه سمیت حاد آترازین در ماهی شیربت (Barbus grypus)، و سپس اثر سمیت مزمن این سم بر روند تجمع زیستی آن در فیلهی این ماهی میباشد. برای تعیین سمیت حاد این سم از روش سازمان همکاری و توسعه اقتصادی (OECD)، استفاده گردید غلظت نیمه کشنده (LC50) 96 ساعته آترازین در ماهی شیربت با استفاده از نرم افزار Probit تعیین شد. سپس180 قطعه ماهی شیربت با میانگین (±SD) وزن 15±102 گرمی به 4 گروه در سه تکرار تقسیم گردیدند. گروه 1، 2 و 3 به ترتیب با غلظتهای 5% (mg l-125/3)، 10% ( mg l-15/6) و 20% (mg l-1 13) LC50 96 ساعته آترازین مجاور شدند. گروه 4 نیز بدون مجاورت با سم به عنوان گروه کنترل در نظر گرفته شد. دورهی مجاورت 21 روز بوده و در روزهای صفر، 7، 14 و 21 نمونهبرداری انجام گرفت. نتایج نشان داد آترازین در ماهی شیربت سبب سمیت شده و این سمیت با افزایش غلظت و نیز مدت مجاورت افزایش مییابد. LC50 96 ساعته این سم در ماهی شیربت 65 میلیگرم در لیتر محاسبه گردید. میزان تجمعپذیری آترازین در گروههای 2 و 3 با افزایش طول دوره نمونهگیری معنیدار بود. در مجموع با توجه به افزایش معنیدار تجمعپذیری سم آترازین، میتوان نتیجهگرفت که هنگامی که ماهی شیربت در معرض غلظت های زیاد سم آترازین قرار گیرد منجر به افزایش تجمع پذیری سم در این ماهی می شود.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103538_220f5bf59d94880454f886ecef00febf.pdf
2014-09-23
21
30
10.22092/isfj.2014.103538
آترازین
سمیت مزمن
تجمعپذیری زیستی
ماهی شیربت
علی
خبازیان زاده
alikhabazian2011@gmail.com
1
LEAD_AUTHOR
علی
دادالهی سهراب
2
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
3
AUTHOR
سید حسین
خزاعی
4
AUTHOR
حسین محمد
عسگری
5
AUTHOR
حاجی شرفی غ.، و شکوه فر ع.،1388. جایگزینی علفکشهای نیشکری بهمنظور مصرف سموم شیمیایی و استفاده بهینه از نهادههای کشاورزی در مزارع نیشکر استان خوزستان. فصلنامهی علمی تخصصی فیزیولوژی گیاهان زراعی، 79-88 :(1)1.
1
خواجه پور م.، گلابکش ش. و غیاثی خیاط، م.، 1389. بررسی اهمیت تالاب بین المللی شادگان (ارزش ها، تهدیدها و روش های بهبود آن). همایش ملی تالاب ها و نقش آن در مدیریت جامع منابع آب، 41-52 :(3)2.
2
Abdali S., Yousefi Jourdehi A., Kazemi R. and Yazdani M.A., 2011. Effects of Atrazine (Herbicide) on blood biochemical indices of Grass Carp (Ctenopharhyngoden idella). Journal of the Persian Gulf, 2: 51-56.
3
Atamanalp M. and Yanik T., 2003. Alternations in hematological parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) exposed to mancozeb.Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences, 27(5).
4
Bekeh Ada F., Ayotunde E.O. and Bayim B.P.R., 2012. Some biological and hematological responses of Oreochromis niloticus juveniles exposed to Atrazine herbicide. Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation-International Journal of the Bioflux Society (AACL Bioflux), 5.
5
Cerdeira A., Santos N., Ueta J., Shuhama I., Pessoa M., Smith S. and Lanchote V., 2004. Atrazine in water and biodegradation in a recharge area of Guarany Aquifer in Brazil. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 73: 117-124.
6
Correll D.L. and Wu T.L., 1982. Atrazine toxicity to submersed vascular plants in simulated estuarine microcosms. Aquatic Botany, 14: 151-158.
7
Du Preez H.H. and Van Vuren J., 1992. Bioconcentration of atrazine in the banded tilapia Tilapia sparrmanii. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Comparative Pharmacology, 101: 651-655.
8
Forouzangohar M., Haghnia G.H. and Koocheki A., 2005. Organic amendments to enhance atrazine and metamitron degradation in two contaminated soils with contrasting textures. Soil & Sediment Contamination, 14: 345-355.
9
Ghosh P.K. and Philip L., 2004. Atrazine degradation in anaerobic environment by a mixed microbial consortium. Water Research, 38: 2277-2284.
10
Gluth G. and Hanke W., 1985. A comparison of physiological changes in carp, Cyprinus carpio, induced by several pollutants at sublethal concentrations: I. The dependency on exposure time. Ecotoxicology and Environmental Safety, 9: 179-188.
11
Hussein S., El-Nasser M. and Ahmed S., 1996. Comparative studies on the effects of herbicide atrazine on freshwater fish Oreochromis niloticus and Chrysichthyes auratus at Assiut, Egypt. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 57: 503-510.
12
Jacomini A.E., Avelar W.E.P., Martinêz A.S. and Bonato P.S., 2006.
13
Bioaccumulation of atrazine in freshwater bivalves Anodontites trapesialis (Lamarck, 1819) and Corbicula fluminea (Müller, 1774). Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 51: 387-391.
14
Klaassen H.E. and Kadoum A.M., 1979. Distribution and retention of atrazine and carbofuran in farm pond ecosystems. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 8: 345-353.
15
Moore A. and Waring C.P., 2001. The effects of a synthetic pyrethroid pesticide on some aspects of reproduction in Atlantic salmon. Aquatic Toxicology, 52: 1-12.
16
Prasad T., Srinivas T., Rafi G.M. and Reddy D., 1991. Effect in vivo of atrazine on haematology and O2 consumption in fish, Tilapia mossambica. Biochemistry International, 23: 157-161.
17
Prasad T., Srinivas T., Rafi M. and Reddy D., 1990. Chronic effect of atrazine on hydromineral balance in the crab. Biochemistry International, 22: 435-440.
18
Ramesh M., Srinivasan R. and Saravanan M., 2009. Effect of atrazine (Herbicide) on blood parameters of common carp Cyprinus carpio (Actinopterygii: Cypriniformes). African Journal of Environmental Science and Technology, 3(12).
19
Rymuszka A., Siwicki A.K. and Sieroslawska A., 2007. Determination of modulatory potential of atrazine on selected functions of immune cells isolated from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Centre European Journal Immunology, 32: 97–100.
20
Sherma J., 1995. Pesticides. Analytical Chemistry, 67:, 1R-20R.
21
Sobhanzadeh E., Abu Bakar N.K., Abas M.R.B. and Nemati K., 2011. Low temperature followed by matrix solid-phase dispersion-sonication procedure for the determination of multiclass pesticides in palm oil using LC-TOF-MS. Journal of Hazardous Materials, 186: 1308-1313.
22
Solomon K.R., Baker D.B., Richards R.P., Dixon K.R., Klaine S.J., La Point T.W., Kendall R.J., Weisskopf C.P., Giddings J.M. and Giesy J.P., 1996. Ecological risk assessment of atrazine in North American surface waters. Environmental Toxicology and Chemistry, 15: 31-76.
23
ORIGINAL_ARTICLE
اثر عصاره اتانولی جلبک قهوه ای Sargassum angustifolium بر عملکرد رشد، درصد بقاء، و مقاومت در برابر ویبریوزیس (Vibrio harveyi) در میگوی پا سفید غربی Litopenaeus vannamei
در این مطالعه اثر عصاره الکلی جلبک دریایی Sargassum angustifoliumبدست آمده از سواحل خلیج فارس بر رشد و درصد بقاء بچه میگوی سفید غربی(وانامی) Litopenaeus vannamei در مواجهه با باکتری Vibrio harveyiبررسی شد. آرتمیا با پودر عصاره جلبک غنی سازی شد، سپس به بچه میگوهای وانامی مورد پرورش در 5 گروه مختلف شامل C- (آرتمیای غنی نشده، فاقد باکتری)، کنترل مثبت C+ (آرتمیای غنی نشده، واجد باکتری)، T1 (آرتمیای غنی شده با mg l-1200 عصاره جلبک و واجد باکتری)، T2 (آرتمیای غنی شده با mg l-1400 عصاره جلبک و واجد باکتری)، T3 (آرتمیای غنی شده با mg l-1600 عصاره جلبک و واجد باکتری)، خورانده شد. یک هفته پس از آغاز پرورش، همه تیمارها به جز کنترل منفی به مدت 15 دقیقه در ظرفی که حاوی باکتری VH به میزان CFU ml-1 108× 5/1 بود قرار گرفتند و سپس به محیط پرورش برگردانده شدند. پس از آن در روزهایی که تعویض آب صورت می گرفت به میزان 10 میلی لیتر باکتری VH با دز CFU ml-1 107 × 5/1 به محیط کشت میگوها اضافه می شد. میگوهای کنترل منفی بیشترین درصد بقاء (3/4± 6/86%)، بیشترین نرخ رشد ویژه (%33/11) و کمترین بار آلودگی باکتریایی(CFU g-1tissue 103× 03/0± 5/0) بود، در حالیکه کمترین درصد بقاء (3/33%)، کمترین نرخ رشد ویژه (%90/9) و بیشترین بار آلودگی باکتری (CFU g-1tissue 105×0.05± 4. 3) در گروه کنترل مثبت دیده شد و این تفاوت معنی دار بود (05/0 p<). درصد بقاء و نرخ رشد ویژه در سایر گروههای تیماری به طور معنی داری بیشتر از گروه کنترل مثبت و کمتر از گروه کنترل منفی بوده و بار آلودگی باکتری نیز کمتر از گروه کنترل مثبت و بیشتر از گروه کنترل منفی بود (05/0 p<). در بین گروههای تیماری نیز گروه T2 که از آرتمیای غنی شده با mg l-1400 عصاره جلبک تغذیه شده بودند، نتایج بهتری نشان داد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103539_ce3ccddb1752ad82491a3cebc4317c04.pdf
2014-09-23
31
40
10.22092/isfj.2014.103539
Sargassum angustifolium
آترازین
سمیت مزمن
عصاره الکلی
Litopenaeus vannamei
تجمعپذیری زیستی
Vibrio harveyi
ماهی شیربت
رشد
بقاء
عقیل
دشتیان نسب
adashtiannasab@gmail.com
1
LEAD_AUTHOR
مهرزاد
مصباح
mehrmesbah@yahoo.com
2
AUTHOR
رحیم
پیغان
peyghan-r@scu.ac.ir
3
AUTHOR
شاپور
کاکولکی
bsh443@yahoo.com
4
AUTHOR
حاجی شرفی غ.، و شکوه فر ع.،1388. جایگزینی علفکشهای نیشکری بهمنظور مصرف سموم شیمیایی و استفاده بهینه از نهادههای کشاورزی در مزارع نیشکر استان خوزستان. فصلنامهی علمی تخصصی فیزیولوژی گیاهان زراعی، 79-88 :(1)1.
1
خواجه پور م.، گلابکش ش. و غیاثی خیاط، م.، 1389. بررسی اهمیت تالاب بین المللی شادگان (ارزش ها، تهدیدها و روش های بهبود آن). همایش ملی تالاب ها و نقش آن در مدیریت جامع منابع آب، 41-52 :(3)2.
2
Abdali S., Yousefi Jourdehi A., Kazemi R. and Yazdani M.A., 2011. Effects of Atrazine (Herbicide) on blood biochemical indices of Grass Carp (Ctenopharhyngoden idella). Journal of the Persian Gulf, 2: 51-56.
3
Atamanalp M. and Yanik T., 2003. Alternations in hematological parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) exposed to mancozeb.Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences, 27(5).
4
Bekeh Ada F., Ayotunde E.O. and Bayim B.P.R., 2012. Some biological and hematological responses of Oreochromis niloticus juveniles exposed to Atrazine herbicide. Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation-International Journal of the Bioflux Society (AACL Bioflux), 5.
5
Cerdeira A., Santos N., Ueta J., Shuhama I., Pessoa M., Smith S. and Lanchote V., 2004. Atrazine in water and biodegradation in a recharge area of Guarany Aquifer in Brazil. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 73: 117-124.
6
Correll D.L. and Wu T.L., 1982. Atrazine toxicity to submersed vascular plants in simulated estuarine microcosms. Aquatic Botany, 14: 151-158.
7
Du Preez H.H. and Van Vuren J., 1992. Bioconcentration of atrazine in the banded tilapia Tilapia sparrmanii. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Comparative Pharmacology, 101: 651-655.
8
Forouzangohar M., Haghnia G.H. and Koocheki A., 2005. Organic amendments to enhance atrazine and metamitron degradation in two contaminated soils with contrasting textures. Soil & Sediment Contamination, 14: 345-355.
9
Ghosh P.K. and Philip L., 2004. Atrazine degradation in anaerobic environment by a mixed microbial consortium. Water Research, 38: 2277-2284.
10
Gluth G. and Hanke W., 1985. A comparison of physiological changes in carp, Cyprinus carpio, induced by several pollutants at sublethal concentrations: I. The dependency on exposure time. Ecotoxicology and Environmental Safety, 9: 179-188.
11
Hussein S., El-Nasser M. and Ahmed S., 1996. Comparative studies on the effects of herbicide atrazine on freshwater fish Oreochromis niloticus and Chrysichthyes auratus at Assiut, Egypt. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 57: 503-510.
12
Jacomini A.E., Avelar W.E.P., Martinêz A.S. and Bonato P.S., 2006.
13
Bioaccumulation of atrazine in freshwater bivalves Anodontites trapesialis (Lamarck, 1819) and Corbicula fluminea (Müller, 1774). Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 51: 387-391.
14
Klaassen H.E. and Kadoum A.M., 1979. Distribution and retention of atrazine and carbofuran in farm pond ecosystems. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 8: 345-353.
15
Moore A. and Waring C.P., 2001. The effects of a synthetic pyrethroid pesticide on some aspects of reproduction in Atlantic salmon. Aquatic Toxicology, 52: 1-12.
16
Prasad T., Srinivas T., Rafi G.M. and Reddy D., 1991. Effect in vivo of atrazine on haematology and O2 consumption in fish, Tilapia mossambica. Biochemistry International, 23: 157-161.
17
Prasad T., Srinivas T., Rafi M. and Reddy D., 1990. Chronic effect of atrazine on hydromineral balance in the crab. Biochemistry International, 22: 435-440.
18
Ramesh M., Srinivasan R. and Saravanan M., 2009. Effect of atrazine (Herbicide) on blood parameters of common carp Cyprinus carpio (Actinopterygii: Cypriniformes). African Journal of Environmental Science and Technology, 3(12).
19
Rymuszka A., Siwicki A.K. and Sieroslawska A., 2007. Determination of modulatory potential of atrazine on selected functions of immune cells isolated from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Centre European Journal Immunology, 32: 97–100.
20
Sherma J., 1995. Pesticides. Analytical Chemistry, 67:, 1R-20R.
21
Sobhanzadeh E., Abu Bakar N.K., Abas M.R.B. and Nemati K., 2011. Low temperature followed by matrix solid-phase dispersion-sonication procedure for the determination of multiclass pesticides in palm oil using LC-TOF-MS. Journal of Hazardous Materials, 186: 1308-1313.
22
Solomon K.R., Baker D.B., Richards R.P., Dixon K.R., Klaine S.J., La Point T.W., Kendall R.J., Weisskopf C.P., Giddings J.M. and Giesy J.P., 1996. Ecological risk assessment of atrazine in North American surface waters. Environmental Toxicology and Chemistry, 15: 31-76.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر نایسین Z بر برخی پارامترهای شیمیایی و باکتریایی مولد فساد در سوریمی ماهی کیلکا معمو لی (Clupeonella cultriventris caspia) نگهداری شده در دمای 4 درجه سانتی گراد
در این مطالعه تاثیر ضد باکتریایی و ضد اکسیدانی نایسین Z در دو شکل آزاد و ریزپوشانی شده بر برخی پارامترهای میکروبی (شمارش کلی باکتریها، شمارش باکتریهای سرماگرا) و شاخصهای شیمیایی فساد (عدد پراکسید، میزان تیوباربیتوریک اسید، مقدار بازهای ازته فرار) سوریمی ماهی کیلکای معمولی(Clupeonella cultriventris caspia) در روزهای 0، 3، 6، 9، 12 و 15 دوره نگهداری مورد سنجش قرار گرفت. غلظتهای مورد استفاده برای نایسین آزاد و ریزپوشانی شده (به روش خشک کن پاششی در پوشش لیپوزوم) دو غلظت IU700 و IU1000بر گرم بوده که به روش اسپری به سوریمی کیلکا اضافه شده و یک نمونه نیز به عنوان شاهد (فاقد هر گونه ماده نگهدارنده) در نظر گرفته شد. نتایج بررسی فاکتورهای شیمیایی و میکروبی نشان داد که میزان این شاخصها در تیمارهای حاوی نایسین ریزپوشانی شده به طور معنی داری نسبت به تیمارهای آزاد و همچنین در تیمارهای آزاد به طور معنی داری نسبت به تیمار شاهد کمتر بوده است. همچنین تیمار حاوی IU1000 نایسین ریزپوشانی شده که در معرض بیشترین غلظت نایسین به شکل ریزپوشانی شده بود، به طور معنیداری کمترین تیمار از نظر شاخصهای ذکر شده نسبت به سایر تیمارها بود. با توجه به حد قابل قبول پیشنهادی برای شاخصهای مذکور، عمر ماندگاری فراورده از نظر شاخصهای میکروبی برای تیمارهای شاهد، آزاد و ریزپوشانی شده به ترتیب برابر 9،12، 15 روز و برای تیوباربیتوریک اسید، بازهای ازته فرار و عدد پراکسید به ترتیب 6، 15و حداقل 15 روز بود. با توجه به کمتر بودن نتایج کلی فاکتورهای شیمیایی و میکروبی اندازه گیری شده در این تحقیق در تیمارهای نایسین ریز پوشانی شده نسبت به نایسین آزاد، می توان نتیجه گیری کرد که ریزپوشانی نایسین با لیپوزوم باعث بهبود عملکرد نایسین میشود.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103540_fe604426b6802678a02bd61b45db793d.pdf
2014-09-23
41
56
10.22092/isfj.2014.103540
عبداله
دهبندی
dr_dehbandy@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
مطلبی
motalebi@ifro.ir
2
AUTHOR
ودود
رضویلر
vr@ut.ac.ir
3
AUTHOR
رضا
پورغلام
r_pourgholam@yahoo.com
4
AUTHOR
آخوندزاده بستی، ا.؛ بکایی، س. و قنائی، ک.، 1378. بررسی مقایسه ای دو روش اندازهگیری ازت فرار تام (TVN) و شمارش کلی باکتری های هوازی (Total count) در تعیین کیفیت برخی از ماهیان دریایی استخوانی منجمد. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، 18-15 ،(2)54.
1
اصغری، م.؛ علیزاده دوغیکلایی، ا.؛ صفری، ر.؛ ارشدی، ع. و سعیدی اصل، م.ر.، 1388. بررسی تاثیر نایسین Z. واستات سدیم بر زمان ماندگاری فیله کپور نقرهای (Hypophthalmichthys molitrix) در طی نگهداری در دمای 4 درجه سانتیگراد فصلنامه ی علوم و فناوری غذایی. 64-56 ،(3)1.
2
انوری، م.؛ بهنام، ش.؛ رضایی، م.؛ سلطانیان، س. و صفری، ر.، 1388. پتانیل آنتی باکتریایی و آنتی اکسیدانی باکتریوسین Zدر افزایش زمان ماندگاری فیله ماهی قزل آلای (Oncorhynchus mykiss) بسته بندی شده در خلأ در دمای ºC 4. ششمین همایش ملی بیوتکنولوژی جمهوری اسلامی ایران، مرداد 1388.
3
رضوی شیرازی، ح.، 1373. تکنولوژی فرآوردههای دریایی (اصول نگهداری و عمل آوری). انتشارات پارس نگار، چاپ دوم، صفحات 55-49.
4
سالنامه آماری شیلات ایران. 1383. دفتر طرح و توسعه شیلات ایران.
5
سالنامه آماری شیلات ایران. 1391. دفتر طرح و توسعه شیلات ایران.
6
شاملوفر، م.، 1391. استفاده از نایسین ریزپوشانی شده و سیترات سدیم به منظور افزایش زمان ماندگاری فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorynchus mykiss)در بسته بندی باروش اتمسفر اصلاح شده (MAP) و تاثیر آنها بر باکتری استافیلوکوکوس اورئوس.رساله دکتری. گروه شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات تهران،160صفحه.
7
عبداله زاده، ا.؛ رضایی، م.؛ حسینی، ه. و صفری، ر.، 1390. تاثیر نایسین واسانس آویشن شیرازی به تنهایی و توام با یکدیگر بر جمعیت لیستریا مونوسیتوژنز تلقیح شده در گوشت چرخ شده ماهی فیتوفاگ.مجله علوم صنایع غذایی ایران، 20-13 ،4.
8
محمدزاده، ب. و رضایی، م.، 1390. اثر عصاره چای سبز بر کیفیت چربی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss به هنگام نگهداری زیر یخ. نشریه شیلات. مجله منابع طبیعی ایران، 93-85 ،(1)64.
9
موسوی نسب، م.؛ موسوی نسب، س.؛ عابدی، ع.؛ حقیقی منش، س.؛ خالصی، ه. و عباسفر، ا.، 1387. تولید فرآورده های دریایی با ارزش افزوده. هجدهمین کنگره ملی علوم وصنایع غذایی ایران، مشهد.
10
Al-Dagal, M.M. and Bazarra, W.A., 1999. Extension of shelf-life of whole and peeled shrimp with organic acid salts and bifidobacteria. Journal of Food Protect, 62, 51–56.
11
Al-Holy, M., Lin, M. and Rasco, B., 2005. Destruction of Listeria monocytogenes in sturgeon Acipenser transmontanus caviar by a combination of nisin with chemical antimicrobials or moderate heat. Journal of Food Protection, 68(3), 512-520.
12
AOAC. 2002. Official methods of analysis of the association of the official analysis
13
chemists. Association of Official Analytical Chemists, (14th ed.), Washington, DC New York.AOAC. 2005. Official method of analysis (17th ed). Washington, DC: Association of Official Analytical Chemists.
14
Aubourg, S.P., Perez-Alonso, F. and Gallardo, J.M., 2004. Studies on rancidity inhibition in frozen horse mackerel (Trachurus trachurus) by citric acid and ascorbic acids. European Journal of Lipid Science and Technology, 106, 232-240.
15
Benech R.O., Kheadr E.E., Laridi R., Lacroix C. and Fliss I., 2002. Inhibition of listeria innocua in Cheddar cheese by addition of Nisin Z in Liposomes or by in situ production in mixed culture. Applied and Environmental Microbiolgy, 68(8), 3683-3690.
16
Chaijan, M., Benjakul, S., Visessanguan, W. and Faustman, C., 2006. Changes of lipids in sardine (Sardinella gibbosa) muscle during iced storage. Food Chemistry, 99, 83-91.
17
Cogus, U., Bozoglu, F. and Yurdugul, S., 2006. Comparative effects of lactic acid, nisin, coating combinated and alone applications on some postmortem quality criteria of refrigerated sardina pilchardus[electronic resource]. Journal of Food Quality. Malden, USA : Blackwell Publishing Inc 2006 Dec., 29(6), 658-671.
18
Egan, H., Kril, R.S . and Sawyer, R., 1997. Pearsons chemical analaysis of food. 9 (End), pp. 609-634.
19
Faghani Langroudi, H., Soltani, M., Kamali, K., Ghomi, M.R., Hoseini, S.E., Benjakul, S. and Heshmatipour Z., 2011. Effect of Listeria monocytogenes inoculation, sodiuma cetate and nisin on microbiological and chemical quality of grass carp Ctenopharyngodon idella during refrigeration storage. African Journal of Biotechnology, 10(42), 8484-8490.
20
Fazli, H., Zhang, C.I., Hay, D.E., Lee, C.W., Janbaz, A.A. and Bourani, S.S., 2007. Population dynamics and stock assessment of common kilka (Clupeonella cultriventris caspia) in Iranian water. . Iranian Journal of Fisheries Science, 7, 47-70.
21
Kordel M. and Sahl H.G.,1986. Susceptibility of bacterial eukaryotic and artificial membranes to the disruptive action of cationic peptides pep5 and nisin. FEMS Microbiology Letters, 34, 139-144.
22
Lakshmanan, P.T., 2000. Fish spoilage and quality assessment. In: Iyer TSG, Kandoran MK, Thomas M, Mathew PT (Eds.) Quality assurance in seafood processing (pp. 26–40). Cochin: Society Fisher Techno (India).
23
Lindsay, R.C., 1991. Flavour of fish. Paper presented at 8th World Congress of Food Science and Technology, 29th September - 4th October, Toronto, Canada.
24
L´opez-Caballero, M.E., G´omez-Guill´en, M.C., P´erez-Mateos, M. and Montero P., 2004. A chitosan-gelatin blend as a coating for fish patties. Food Hydrocolloids, 19(2), 303-311.
25
McFaddin, J.F., 2000. Biochemical tests for identification of medical bacteria, 7nd Ed., Baltimore, Williams and Wilkins.
26
Mirdamadi, S., Agha Ghazvini, S., Falahpour, M. and Farzaneh, A.M., 2010. Study of antimicrobial effect of nisin, encapsulated nisin in liposomes and lactococcus lactis as a nisin producer on food born pathogenes. In: International Conference on Food Innovation: FoodInnova 2010. University of Valencia, Spain.
27
Mulders J.W., Boerrigter I.J., Rollema H.S., Siezen R.J. and De Vos W.M., 1991. Identification and characterization of the lantibiotic nisin Z, a natural nisin variant. European Journal of Biochemistry, 201(3), 581-584 .
28
Ojagh, S.M., Rezaei, M., Razavi, S.H. and Hosseini, S.M.H., 2010. Effect of chitosan coatings enriched with cinnamon oil on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chemistry, 120, 193–198.
29
Özogul, F., Polat, A. and Özogul, Y., 2004. The effects of modified atmosphere packaging and vacuum packaging on chemical, sensory and microbiological changes of sardines (Sardina pilchardus). Food Chemistry. 85, 267-273.
30
Özyurt, G., Kuley, E., Özkűtűk, S. and Özogul, F. 2009. Sensory, microbiological and chemical assessment of the freshness of red mullet (Mullus barbutus) and goldband goatfish (Upeneus moluccensis) during storage in ice. Food Chemistry, 1(114), 505-510.
31
Pacheco-Aguilar, R., Lugo-Sanchez, M. E., and Robles-Burgueno, M. R, 2000. Postmortem biochemical and functional characteristic of Monterey sardine muscle stored at 0°c. Journal of Food Science,65(1): 40-47.
32
Pawar, D.D., Malik, S.V.S., Bhilegaonkar, K.N. and Barbuddhe, S.B., 2000. Effect of nisin and its combination with sodium chloride on the survival of Listeria monocytogenes added to raw buffalo meat mince. Meat Science, 56(3), 215-219.
33
Pearson, D., 1994. Laboratory technic in food analysis. Butter Worth. London, UK. pp. 256-270.
34
Rehbein , H. and Oehlenschlager, J., 2009. Fishery products quality, safety and authenticity, John Wiley and Sons.
35
Roler, S., 1995. The quest for natural antimicrobials as novel means of food preservation: Status reports on a European research project. International Biodeterioration and Bioegradation, 36, 333-345
36
Ruiz-Capillas, C. and Moral, A., 2005. Sensory and biochemical aspects of quality of whole bigeye tuna (Thunnus obesus) during bulk storage in controlled atmospheres. Food Chemistry, 89(3), 347–354.
37
Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control, 18(5), 566-575.
38
Salmaso, S., Elvassore, N., Bertucco, A., Lante, A. and Caliceti, P., 2004. Nisin-loaded poly-L-lactide nano-particles produced by CO2 anti-solvent precipitation for sustained antimicrobial activity. International Journal of Pharmaceutics, 287(1-2), 163-173.
39
Schmidt S.E., 2009. Antimicrobial efficacy of liposome encapsulated nisin and nisin’s inhibition against Listeria monocytogenes in fluid milk at different storage temperatures.master s thesis,Texas A&M University .
40
Shimizu, Y., Toyohara, H. and Lanier, T.C., 1992. Surimi production from fatty and dark fleshed fish species.pp.181-207.
41
Shirazinejad, A., Noryati, R., Rosma, A. and Darah, I., 2010. Inhibitory effect of lactic acid and nisin on bacterial and spoilage of chilled shrimp. World Academy of Science Engineering and Technology, 65, 163-167.
42
Stiles M.E., 1994. Potential for biological control of agents of food born disease. Food Research International, 27(30), 245-250.
43
Suarez, M., Héctor, P., Sandra, C. and Cortes, R.M.2008. Physical-chemical quality and sensory attributes of cut bio-preserved cachama fillets vacuum packaging under refrigeration. Rev Colom Cienc Pecua [online]. 21, 330-339.
44
Tome, E., Teixeira, P., & Gibbs, P. A., 2006. Anti-listerial inhibitory lactic acid bacteria isolated from commercial cold smoked salmon. Food Microbiology, 23, 399-405.
45
Xiao D., 2010. Novel delivery systems of nisin to enhance longterm efficacy against foodborne pathogen Listeria monocytogenes. Doctoral Dissertations. University of Tennessee, Knoxville. pp. 1-3.
46
Yeldiz, M., Şener, E. and Gün, H. 2006. Effect of refrigerated storage on fillet lipid quality of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss W.) fed a diet containing different levels of DL α-Tocopherol Acetate. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 30, 143-150.
47
ORIGINAL_ARTICLE
معرفی باکتری های کاهنده آلاینده های فلزی ( آهن ، نیکل) در خور موسی
به منظور جداسازی سویه های باکتریایی مقاوم به فلز آهن و نیکل، نمونه رسوبات از پنج ایستگاه در خور موسی بر روی محیط کشت BHI agar واجد ppm 1000 آهن و ppm 50 نیکل کشت داده شد .توانایی تحمل پذیری سویههای جدا شده به فلز آهن در محیط BHI با توالی غلظت ppm15000-1000 وفلز نیکل با توالی غلظت ppm25000-100 ارزیابی گردید و مقاومترین سویه ها گزینش و حداقل غلظت فلزی مهارکننده رشد(MIC) و حداقل غلظت فلزی کشنده (MBC) سویههای منتخب بررسی گردیدند. نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که از میان 16 سویه جدا شده مقاوم به نیکل و 12 سویه مقاوم به آهن، 2 سویه منتخب16، باسیلوس سابتیلیسBacillus subtilis) ) وسویه منتخب 7 میکروکوکوس ( Micrococcus sp. ) به ترتیب دارای حداقل غلظت فلزی مهار کننده رشد (MIC) وحداقل غلظت فلزی کشنده (MBC)با مقادیر (ppm29800، 29700) و (ppm26500، 26300 ) به نیکل ارزیابی شد. حداقل غلظت فلزی مهار کننده رشد (MIC) آهن قابل بررسی نبود. نتایج نشان داد که بیشترین میزان کاهش نیکل توسط سلول زنده باسیلوس سابتیلیس در محیط دارای ppm194 و ppm71 نیکل پس از72 ساعت به ترتیب 7/16 و 63 درصد و در مورد میکروکوکوس (.( Micrococcus sp در محیط دارای ppm 158 پس از 50 ساعت 4/8 درصد است و بیومس مرده با سیلوس سابتیلیس پس از 2 ساعت در محلول حاوی ppm 59 نیکل قادر به کاهش 6/40 درصد نیکل و در محلول حاوی ppm46 و ppm792 آهن به ترتیب قادر به کاهش21 درصد و 4 4 درصد آهن است. نتایج آنالیز مولکولی نشان داد، باکتری باسیلوس سابتیلیس جدا شده در این تحقیق با توانایی حذف نیکل و آهن کاندیدای مناسبی جهت استفاده در محیط های آبی می باشد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110172_b551d225cc67abbb89e29da1b8e37240.pdf
2014-09-23
57
68
10.22092/isfj.2017.110172
باسیلوس سابتیلیس
میکرو کوکوس
آهن
نیکل
خور موسی
محمود
رامین
ifro-mrifro@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
مسطوره
دوستدار
mastooreh_doustdar@yahoo.com
2
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اندازه گیری تاز گی ماهی تیلاپیا با استفاده از روش Quality index method ( QIM )
تازگی ماهی با استفاده از جداول QIM از طریق حسی بر اساس امتیاز دهی به کلیه اندامهای ماهی در حال تغییر ( مثبت و منفی ) و در نهایت تبدیل پارامترهای کیفی به پارامترهای کمی و آنالیز آماری داده ها استوار است. در جداول استفاده شده نوسانات امتیازها از صفر تا 23 بوده و به ترتیب برای کیفیت عالی امتیاز از صفر تا 3 ، خوب از 3 تا 7 ، متوسط از 7 تا 10و از 10 به بالا غیرقابل قبول ارزیابی میگردد. در این بررسی برای اندازه گیری میزان تازه گی ماهی تیلاپیا گونه Nile Tilapia Oreochromis niloticus) )، سیاه و قرمز در 4 تیمار ، ماهی کامل شکم پر و شکم خالی در نظر گرفته شده و هدف از این تحقیق محاسبه عملی میزان ماندگاری ماهی در شرایط یخ پوشی شده بلافاصله پس از صید با اندازه گیری فاکتورهای کیفی (ارزیابی حسی، شیمیایی و میکروبی) بوده است. بدین منظور تعداد 50 قطعه ماهی تیلاپیا قرمز و 50 قطعه ماهی سیاه بلافاصله پس از صید وزن و شستشو شده و برای هر یونولیت تعداد 25 قطعه (شکم پر – شکم خالی) و با توجه به دمای محیط و به نسبت 3 به 1 ( یخ – ماهی ) یخ پوشی گردید. میانگین (±SD) تغییرات دما در گوشت ماهی در طول مدت بررسی بین07/0± 2/0 تا 1/0±3/0 درجه سانتیگراد بوده است ، چون برای بالا بردن کیفیت تازه گی باید دمای مرکز یونولیتها در حد صفر درجه سانتیگراد حفظ گردد . یونولیتهای ماهی یخ پوشی شده در دمای محیط نگهداری گردیده و با اندازه گیری تغییرات تازه گی ، ازت آزاد ، pH و آزمایشات میکروبی مشخص گردید که حداکثر زمان ماندگاری ماهی کامل شکم خالی 9 روز در شرایط یخ پوشی شده و شکم پر 7 روز بوده و انجام آنالیز آماری داده ها و تست دانکن با مقایسه میانگین داده ها در ماهی یخ پوشی شده به صورت شکم خالی و شکم پر معنی دار بوده است.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110173_7db98319680d1c621765031f1a2862d8.pdf
2014-09-23
69
79
10.22092/isfj.2017.110173
ماهی تیلاپیا
تازه گی
ارزیابی حسی
تغییرات شیمیایی
قربان
زارع گشتی
zarehgashti@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
مطلبی
motalebi@ifro.ir
2
AUTHOR
یزدان
مرادی
ymorady@yahoo.com
3
AUTHOR
علی اصغر
خانی پور
aakhanipour@yahoo.com
4
AUTHOR
نسرین
مشائی
5
AUTHOR
سید حسن
جلیلی
6
AUTHOR
مینا
سیف زاده
7
AUTHOR
فریدون
رفیع پور
8
AUTHOR
فرحناز
لکزایی
9
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
کارایی پودرضایعات مرغ به عنوان جایگزین پودر ماهی در جیره غذایی فیلماهی (Huso huso) در دوران رشد
پودرماهی در جیره غذایی فیلماهی مورد آزمایش قرار گرفت. شش جیره آزمایشی ایزونیتروژنوس و ایزوکالریک محتوی40% پروتئین و20 مگاژول درکیلوگرم انرژی خام تهیه گردید. پودرضایعات مرغ (PBM) در سطوح20،40،60،80 و100% (PBM20، PBM40، PBM60،PBM80 و PBM100) در جیره غذایی اولیه که به عنوان گروه شاهد PBM0 نامیده شده بود مورد استفاده قرار گرفت. تعداد180عدد فیلماهی با میانگین وزن (SD 9/5 ± 89/107 گرم) در18 مخزن فایبرگلاس2000 لیتری در درجه حرارت با میانگین (±SD) 2±20 درجه سانتیگراد بمدت 18هفته با جیره های فوق الذکر تغذیه شدند. اختلاف معنی دار آماری در شاخصهای وزن نهایی (FW)، درصدافزایش وزن بدن (WG%)، ضریب رشد ویژه (SGR) و ضریب تبدیل غذا در ماهیان تیمار شاهد با ماهیان تیمارهای PBM20، PBM40،PBM60 وBM80 مشاهده نشد. لاشه ماهیان تغذیه شده با جیره PBM20 بیشترین میزان پروتئین (SD36/0 ± 97/16%) را داشتند که از لحاظ آماری با مقدار پروتئین لاشه ماهیان تغذیه شده با جیره PBM40 (SD 67/0± 41/15%) دارای اختلاف معنی دار بود. چربی لاشه ماهیان تغذیه شده با جیره های PBM80 وPBM100 (SD 016/0± 63/6%) و (SD 17/0± 49/7%) بطور معنی داری از ماهیان تغذیه شده با جیره های دیگر پایین تر بود. شاخص هپاتوسوماتیک ماهیان با افزایش سطوح جایگزینی پودرضایعات مرغ بجای پودرماهی بطور معنی داری افزایش یافت و بیشترین آن در ماهیان تغذیه شده با جیره فاقد پودرماهی PBM100 ثبت گردید (SD 63/0±2/4 %) و شاخص احشایی به استثنای ماهیان تیمار20% جایگزینی (PBM20) در ماهیان تیمارهای دیگر فاقد اختلاف معنی دار آماری بود. نتایج این آزمایش نشان می دهد که امکان جایگزینی پودرضایعات مرغ بجای پودرماهی در سطوح بالا (80%) بدون تاثیر منفی بر شاخصهای رشد و ضریب تبدیل غذا در دوران رشد فیلماهی امکانپذیر است.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103554_a86792eb9ae8e7b7ef726dc092448087.pdf
2014-09-23
81
96
10.22092/isfj.2014.103554
فیلماهی
پودرماهی
پودر ضایعات مرغ
شاخصهای رشد
ترکیب لاشه
شاخص هپاتوسوماتیک و احشایی
میرحامد
سیدحسنی
mirhamedhassani@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
داوود
طالبی حقیقی
2
AUTHOR
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
3
AUTHOR
محمد علی
یزدانی ساداتی
4
AUTHOR
حمیدرضا
پورعلی
5
AUTHOR
هوشنگ
یگانه
6
AUTHOR
ابراهیمی ع.،پوررضا ج.، پاناماریوف س. کمالی ا. و حسینی ع.، 1383. اثر مقادیر مختلف پروتئین و چربی بر رشد و ترکیب شیمیایی لاشه بچه ماهیان انگشت قد فیلماهی(Husohuso) . مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی، سال 11. شماره 3. 141- 151.
1
سید حسنی م.ح.، طالبیحقیقی ح.، یزدانیساداتی م.ح.،پورعلی ح.م. و یگانه ه.، 1393. تاثیر جایگزینی پودر ضایعات مرغ بجای پودرماهی بر روند رشد، سامانه ی ایمنی، شاخصهای خونی و آنزیمهای کبدی انگشت قد فیل ماهی (Huso huso) . مجله اقیانوس شناسی، سال پنجم، شماره 18 .51-39.
2
محسنی م.، بهمنی م. ، پورعلی ح.م.، ارشد آ.، علیزاده م.، جمالزاد ف.، صوفیانی ن. ، حقیقیان م. و زاهدی فر م.، 1384. تعیین احتیاجات غذایی فیلماهی از مرحله لاروی تا مرحله عرضه به بازار. انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران، 245 صفحه.
3
محسنی م.، پورکاظمی م.، بهمنی م.، پورعلی ح. م .، سپهداری آ.، سیدحسنی م.ح.، کاظمی ر.، حلاجیان ع. و صالحی م.، 1392. مطالعه پرورش گوشتی فیلماهی (Huso huso)با استفاده از جیرههای مختلف غذایی. موسسه تحقیقات شیلات ایران.111 صفحه.
4
Abdul-Halim H.H., Aliyu-Paiko M. and Hashem R., 2014. Partial replacement of fish meal with poultry by product in diet for Snake head, Chana striat ( Bloch, 1993) fingerlings, Journal of the World Aquaculture Society, 45 (2):233-241
5
Abel- Warith A., Russell P.M. and Davis S.J., 2001. Inclusion of a commercial poultry by- product meal
6
as a protein replacement of fish meal in practical diets for African catfish (Clarias gariepinus Burchell 1822(, Aquaculture Research, 32: 296-305.
7
Aliyu-Paiko M., Hashim R. and Shu-Chien A.C., 2010. Influence of dietary lipid/protein ratio on survival, growth, body indices and digestive lipase activity in Snakehead (Channa striatus, Bloch 1793) fry reared in recirculating water system. Aquaculture Nutrition, 16:466–474.
8
AOAC 2005. Official method of analysis (17th ed). Washington, DC: Association of Official Analytical Chemists.
9
Bureau D.P., Harris, A.M. and Cho C.Y., 1999. Apparent digestibility of rendered animal protein ingredients for rainbow trout. Aquaculture, 180: 345– 358.
10
Chamberlain G.W., 2000. Aquaculture projections for use of fishmeal and oil. The Annual Meeting of FOMA, Lima, Peru.
11
Davis D. A. and Arnold C.R ., 2000. Replacement of fish meal in practical diets for the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei.Aquaculture, 185: 291-298.
12
Davis D.A., Rhodes M. and Quintero H.E., 2009. Update on nutrition research with Florida pompano (Trachinotus carolinus).Abstracts of the 25th Annual Meeting of the Alabama Fisheries Association. 33: 415– 423.
13
Dong F.M., Hardy R.W., Haard N.F., Borrows F.T., Rasco B.A., Fairgrieve W.T. and Forster I.P., 1993. Chemical composition and protein digestibility of poultry by-product meals for Salmonid diets. Aquaculture, 116:149-158.
14
El Boushy A. R.Y. and Van der Poel A.F.B.,2000. Handbook of poultry feed from waste: processing and use. Springer-Verlag New York, 428 P.
15
Fowler L.G., 1991. Poultry by-product meal as a dietary protein source in fall Chinook salmon diets. Aquaculture, 99: 309–321.
16
Gallagher M.L. and Degani G., 1988. Poultry meal and poultry oil as sources of protein and lipid in the diet of European eels (Anguilla anguilla). Aquaculture, 73: 177–187.
17
Gatlin D. M., 2002. Nutrition and fish health. In: Halver J. (Ed). Fish nutrition. (Third edition) Elsevier Science, pp 671-702.
18
Gaylord T.G. and Rawles S.D., 2005. The modification of poultry by product meal for use in hybrid striped bass (Morone chrysops × M. saxatilis) diets. Journal of World Aquaculture Society, 36: 365-376.
19
Giencross B.D., Booth M. and Allan G.L., 2007. A feed is only as good as its ingredients - a review of ingredient evaluation strategies for aquaculture feeds. Aquaculture Nutrition, 13 :( 1) 17-34.
20
Gill T. A., 2000. Waste from processing aquatic animals and animal by-products: Implications on aquatic animal pathogen transfer. FAO Fisheries Circular, vol. 956. FAO, Rome. FIIU /C956, 26 P.
21
Hao N.V. and Yu Y., 2003. Partial replacement of fishmeal by MBM and PFGPBM in diets for river catfish (Pangasianodon hypophthalmus). Research Report, No.33.
22
Hernandez C.,Olvera-Novoa M.A., Hardy R.W., Hermosillo A., Reyes C . and Gonzalez, B., 2009. Completed replacement of fish meal by procrine and poultry by product meals in practical diets for fingerling Nile tilapia (Oreochromis niloticus): Digestibility and growth performance. Aquaculture Nutrition , 24: 219-235.
23
Hung S. O., Aikins K.F., Lutes P. B. and Xu R .,1989. Ability of juvenile whitesturgeon Acipenser transmontanus to utilize different Carbohydratesource. Journal Nutrition, 119:272-733.
24
Koros A., Hanczko R., Jambor A., Quin Y., Perl A. and Molnar-Perl I., 2007: Analysis of amino acids and biogenic amines in biological tissue as thier ophthalaldehyde/ ethanethiol /flourenylmethylchloroformate derivatives by high performance liquid chrom atography: Adeproteinization study. Journal of Chromatography A, 1149: 46-55.
25
Kureshy N., Davis D.A. and Arnold, C.D., 2000. Partial replacement of fish meal with meat- and-bone meal, flash-dried poultry by product meal, enzyme digested poultry by- product meal in practical diets for juvenile red drum. Nutrition Amin Journal Aquaculture, 62: 26 6– 272.
26
Lazo J.P., Davis D.A. and Arnold C.R., 1998. The effects of dietary protein level on growth, feed efficiency and survival of juvenile Florida pompano (Trachinotus carolinus).Aquaculture, 169: 225–232.
27
Liu H., Wu X., Zhao W., Xue M., Guo, L., Zheng, Y. and Yu, Y., 2008. Nutrients apparent digestibility coefficients of selected protein sources for juvenile Siberian sturgeon (Acipenser baerii Brandt), compared by two chromic oxide analyses methods. Aquaculture Nutrition, 15: 650–656.
28
Miller T.,1996. Utilizing rendered products: Petfood. In: Franco D A, Swanson W (Eds.). The original recyclers. The Animal Protein Industry, the Fats and Proteins Research Foundation and The National Renderers Association, Alexandria, pp. 203–223.
29
Moyle P.B., 1976. Sturgeon family, Acipenseridae.In:Inland Fishes of California. University of California Press, Berlely, California, pp. 95-99
30
Nengas L., Alexis M. and Davies S.J., 1999. High inclusion levels of poultry meals and related by-product in diets for gilthead sea bream (Sparus aurata L.). Aquaculture, 179: 13 –23.
31
New M.B. and Wijkstöm U.N., 2002. Use of fishmeal and fish oil in aqua feeds: further thoughts on the fishmeal trap. FAO Fisheries Circular, No. 975 FIPP/C975. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome.
32
Parés-Sierra G., Durazo E., Ponce M.A., Badillo D., Correa-Reyes G.C. and Viana M.T., 2012. Partial to total replacement of fishmeal by poultry by-product meal in diets for juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and their effect on fatty acids from muscle tissue and the time required to retrieve the effect. Aquaculture Research, 12: 24-36.
33
Pine H., Daniels W.H., Davis D, A. and Jiang M., 2008. Replacement of fish meal with poultry By –product meal as a protein source in pond-raised sunshine bass ( Morone chrysops × M.saxatilis) diets. Journal of the World Aquaculture Society, 39 (5): 568-597.
34
Pinto P. and Furci G., 2006. Salmon Piranha Style: Feed conversion efficiency in the Chilean salmon farming industry. Terram Publication, App 34, English Language Version. 21 P.
35
Rawles S.D., Riche M., Gaylord T.G., Webb J., Freeman D.W. and Davis M., 2006. Evaluation of poultry by-product meal in commercial diets for hybrid striped bass (Morone chrysops ♀×M. saxatilis ♂) in recirculated tank production. Aquaculture, 259: 377–389.
36
Rawles S.D., Thompson K.R., Bradely I., Metts L.S., Aksoy M.Y., Gannam A.T., Twibell R.G. and Webster C.D., 2011. Effect of replacing fish meal with poultry by product and soybean and reduced protein level on the performance and immune status of pond – grown sunshine bass (Morone chrysops × M.saxatilies). Aquaculture Nutrition, 17: 708-721.
37
Riche M. and Williams T., 2011. Fish meal replacement with solvent extracted soybean meal or soy protein isolate in a practical diet formulation for Florida pompano (Trachinotus carolinus, L.) reared in low salinity. Aquaculture Nutrition 17 (4):368 - 379
38
Ronyai A., Peteri A. and Radics F., 1990. Cross breeding of sterlet and Lena River’ssturgeon. Aquaculture, Hungrica (Szarwas), 6: 13-18.
39
Schipp G., 2008. Is the use of fishmeal and fish oil in aquaculture diets sustainable?. Technote. No: 124.
40
Sevgili H., 2002. Gokusagi Alabaghi (Oncorhynchus mykiss) rasyonlarında tavuk mezbaha artıklarıununun, balık unu yerine kullanılma olanakları. MSc thesis. Antalya: University of Mediterranean, 256 P.
41
Sevgili H. and Erturk, M., 2004. Effect of replacement of fish meal wih poultry by product meal on growth performance on practical diets for rainbow trout Onchorynchus mykiss . AKDENİZ ÜNİVERSİTESİ ZİRAAT FAKÜLTESİ DERGİSİ, 17(2): 161-167.
42
Shappawi R., Ng W.K. and Mustafa S., 2007. Replacement of fish meal with poultry by- product meal in diets formulated for the humpback grouper, Cromileptes altivelis. Aquaculture, 273: 118-126.
43
Steffens W., 1994. Replacement of fish meal with poultry byproduct meal in diets for rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture, 124: 27–34.
44
Tacon G.J. and Metian M., 2008. Global overview on the use of fish meal and fish oil industrially compounded aqua feeds: Trends and future prospects. Aquaculture, 285: 146-158.
45
Takagi S.T., Hosokawa H., Shimino S. and Ukawa M., 2000. Utilization of poultry by- product in a diet for red sea bream Pargus major. Nippon Suisan Gakkaishi, 66: 482-438.
46
Thompson K.R., Metts L.S., Muzinic L.A., Dascupta S., Webster C.D. and Brady Y.J., 2007. Use of turkey meal as a replacement for menhaden fish meal in practical diets for sunshine bass grown in cages , Nutrition Amin Journal Aquaculture, 69: 351–359.
47
Watson H., 2006. Poultry meal vs. poultry by-product meal. Dogs in Canada Magazine.2P
48
Webter C.D., Urag A., Tiu A.N. and Morgan N.M.,1999. Effect of partial and total replacement of fish meal on growth and body composition of sunshine bass Moronechrysops × M. saxatilis fed practical diets. Journal of the World Aquaculture Society, 30(4): 443-453.
49
Webster C.D., Thompson K.R., Morgan A .M., Grisby E.J. and Gannam A .L., 2000. Use of hempseed meal, poultry by-product meal, and canola meal in practical diets without fish meal for sunshine bass (Morone chrysops × M . saxatilis). Aquaculture, 188: 299 –309.
50
Xue M., Wu X., Ren Z., Gao P., Yu N. and Pearl G., 2006. Effects of six alternative lipid sources on growth and tissue fatty acid composition in Japanese sea bass (Lateolabrax Japanicus), Aquaculture, 206: 206-214.
51
Yigit M., Erdem M., Koshio S., Ergun S., Turker A. and Karaali B., 2006. Substituting fish meal with poultry by-product meal in diets for Black Sea turbot Psetta maeotica. Aquaculture Nutrition, 12: 340–347.
52
ORIGINAL_ARTICLE
تاٴثیر فلوکستین بر میزان مصرف غذا و رفتار غذایی در ماهی طلایی Carassius auratus
سروتونین از جمله مونوآمینهایی است که نقش بالقوهای در تنظیم مصرف غذا در پستانداران دارد و هر عاملی که بتواند فعالیت سروتونرژیک را افزایش دهد باعث کاهش اشتها میگردد. فلوکستین به عنوان ماده مؤثر داروی پروزاک با بلوکه کردن بازجذب سروتونین، موجب افزایش آن شده و با توجه به ورود این ماده به اکوسیستمهای آبی به عنوان یک ماده آلاینده مطرح است. در این مطالعه نقش فلوکستین در میزان مصرف غذا و رفتار تغذیهای ماهی طلایی، Carassius auratus بررسی گردید. در آزمایش 1، ماهیان با وزن 49-21 گرم در چهار گروه تقسیم شدند. گروه کنترل: بدون هیچگونه تزریق؛ گروه تزریق شده با سرم فیزیولوژیک؛ و گروههای تزریق شده با µg g-1 1 و µg g-1 10 وزن بدن فلوکستین که در 5 نوبت به صورت یک روز در میان تزریق شدند. میزان مصرف غذا بعد از هر تزریق محاسبه شد و در نهایت تغییرات وزنی تیمارها نیز بررسی گردید. در آزمایش 2، تعداد 20 عدد ماهی طلایی در دو گروه برای آزمون رفتاری انتخاب شدند که شامل گروه کنترل و گروه تزریق شده با µg g-110 وزن بدن فلوکستین بودند که در 5 نوبت به صورت یک روز در میان تزریق شدند. بعد از هر تزریق رفتارهای تغذیهای نمونهها بررسی شد. نتایج نشان داد که فلوکستین باعث کاهش معنادار مصرف غذا در ماهیان میشود. کاهش مصرف غذا، کاهش معنادار وزنگیری را در گروه Flu-10 به دنبال داشت. همچنین فلوکستین بر رفتار غذایی ماهی طلایی مؤثر بوده و میل به جستجو و مصرف طعمه را بطور معنیدار کاهش داد. این مطالعه نقش بالقوه یکی از داروهای انسانی را بر فاکتورهای تغذیهای یک ماهی استخوانی مشخص کرده و نشان میدهد که فلوکستین میتواند فاکتورهای غذایی و رشدی را در ماهی طلایی تحت تاٴثیر قرار دهد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103555_c9b35a712836ffde04ea1337a1befb96.pdf
2014-09-23
97
108
10.22092/isfj.2014.103555
فلوکستین
ماهی طلایی
تزریق درون صفاقی
مصرف غذا
رفتار غذایی
محمد نوید
فرصتکار
1
AUTHOR
کاظم
کوکرم
2
AUTHOR
محمد علی
نعمتاللهی
malahi@ut.ac.ir
3
LEAD_AUTHOR
Andrew S. K., James D. S., Geoffrey T. G., Timothy C. A. M. and Colin H., 2004. A video-based movement analysis system to quantify behavioral stress responses of fish. Water Research, 38, 3993–4001.
1
Brooks, B. W., Foran, C. M., Richards, S. M., Weston, J., Turner, P. K., Stanley, J. K., Solomon D. R., Slattery M. and La Point T. W., 2003. Aquatic ecotoxicology of fluoxetine. Toxicological Letters, 142, 169–183.
2
Brooks B. W., Chambliss C. K., Stanley J. K., Ramirez A., Banks K. E., Johnson R. D. and Lewis R. J., 2005. Determination of select antidepressants in fish from an effluent-dominated stream. Environmental Toxicology Chemistry, 24, 464–469.
3
Brooks B.W., Huggett D.B. and Boxall A.B.A., 2009. Pharmaceuticals and personal care products: research needs for the next decade. Environmental Toxicology Chemistry, 28, 2469–2472.
4
Cantor J. M., Binik Y. M. and Pfaus J. G., 1999. Chronic fluoxetine inhibits sexual behavior in the male rat: reversal with oytocin. Psychopharmacology, 144, 355–362.
5
Chu S. and Metcalfe C. D., 2007. Analysis of paroxetine, fluoxetine and norfluoxetine in fish tissues using pressurized liquid extraction, mixed mode solid phase extraction cleanup and liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Journal of Chromatography A, 1163, 112–118.
6
Clotfelter E. D., O'Hare E. P., McNitt M. M., Carpenter R. E. and summers C. H., 2007. Serotonin decreases aggression via 5-HT1A receptors in the fighting fish Betta splendens. Pharmacology, Biochemistry and Behavior, 87, 222-231.
7
Connoley I. P., Heal D. J. and Stock M. J., 1995. A study in rats of the effects of sibutramine on food intake and thermogenesis. British Journal of Pharmacology, 114, 388P.
8
Curzon G., 1991. Effects of tryptophan and of 5-hydroxytryptamine receptor subtype agonists on feeding. Advance Experimental Medical Biology, 294, 377–388.
9
de Pedro N., Pinillos M. L., Valenciano A. I., Alonso-Bedate M. and Delgado M. J., 1998. Inhibitory effect of serotonin on feeding behavior in goldfish: Involvement of CRF. Peptides, 19, 505–511.
10
de Vane C. L., 2000. Metabolism and pharmacokinetics of selective serotonin reuptake inhibitors. Cellular Molecular Neurobiology, 19, 443–466.
11
Fogelson D. L., 1991. Weight gain during fluoxetine treatment. Journal of Clinical Psychopharmacology, 11, 220 -221.
12
Foran C. M., Weston J., Slattery M., Brooks B. W. and Huggett D. B., 2004. Reproductive assessment of Japanese medaka (Oryzias latipes) following a four week fluoxetine exposure (SSRI). Archive Environmental Contaminant Toxicology, 46, 511–517.
13
Forsatkar M. N., Nematollahi M. A., Amiri B. M. and Huang W. B., 2014. Fluoxetine inhibits aggressive behaviour during parental care in male fighting fish (Betta splendens, Regan). Ecotoxicology, 23(9), 1794-1802.
14
Gutierrez A., Saracibar G., Casis L., Echevarria E., Rodriguez V. M., Macarulla M. T., Abecia L. C. and
15
Halford J. C. and Blundell J. E., 1996. Metergoline antagonises fluoxetine-induced suppression of food intake but not changes in the behavioural satiety sequence. Pharmacology, Biochemistry and Behavior, 54, 745-751.
16
Halford J. C., Harrold J. A., Boyland E. J., Lawton C. L. and Blundell J. E., 2007. Serotonergic drugs: Effects on appetite expression and use for the treatment of obesity. Drugs, 67, 27–55.
17
Himick B., 1994. Bombesin and cholecytokinin regulate feeding behavior and anterior pituitary hormone release in goldfish. PhD dissertation, University of Alberta.
18
Hiemke C. and Hartter S., 2000. Pharmacokinetics of selective serotonin reuptake inhibitors. Pharmacology and Therapy, 85, 11–28.
19
Kwon J. W. and Armbrust K. L., 2006. Laboratory persistence and fate of fluoxetine in aquatic environments. Environmental Toxicology Chemistry, 25, 2561–2568.
20
Lam D. D. and Heisler L. K., 2007. Serotonin and energy balance: molecular mechanisms and implications for type 2 diabetes. Expert Rev. Molecular Medicine, 9, 1–24.
21
Lepage L., Larson E. T., Mayer I. and Winberg S., 2005. Serotonin, but not melatonin, plays a role in shaping dominant-subordinate relationships and aggression in rainbow trout. Hormones and Behavior, 48, 233-242.
22
Mennigen J. A., Harris E. A., Chang J. P., Moon T. W. and Trudeau V. L., 2009. Fluoxetine affects weight gain and expression of feeding peptides in the female goldfish brain. Regulatory Peptides, 155, 99–104.
23
Mennigen J.A., Sassine J., Trudeau V. L. and Moon T. W., 2010. Waterborne fluoxetine disrupts feeding and energy metabolism in the goldfish Carassius auratus. Aquatic Toxicology, 100, 128–137.
24
Oliveira R., Domingues I., Grisolia C. K. and Soares A. M. V. M., 2009. Effects of triclosan on zebrafish early-life stages and adults. Environmental Scientific Pollutant Research, 16, 679–688.
25
Orvos D. R., Versteeg D. J., Inauen J., Capdevielle M., Rothenstein A. and Cunningham V., 2002. Aquatic toxicity of triclosan. Environmental Toxicology Chemistry, 21, 1338–1349.
26
Peeke H. V. S., Blank G. S., Fliger M. H. and Chang E. S., 2000. Effects of exogenous serotonin on a motor behavior and shelter competition in juvenile lobsters (Homarus americanus). Journal of Comparative Physiology A., 186, 575-582.
27
Pijl H., Koppeschaar H. P. F., Willekens F. L. A., Op de Kamp I., Veldhuis H. D. and Meinders A. E., 1991. Effect of serotonin reuptake inhibition by fluoxetine on body weight and spontaneous food choice in obesity. International Journal of Obesity, 15, 237–242.
28
Portillo M. P., 2002. Effects of Fluoxetine Administration on Neuropeptide Y and Orexins in Obese Zucker Rat Hypothalamus. Obesity Research, 10, 532-539.
29
Ramirez A. J., Brain R. A., Usenko S., Mottaleb M. A., O’Donnell J. G., Stahl L. L., Wathen J. B., Snyder B. D., Pitt J. L., Perez-Hurtado P., Dobbins L. L., Brooks B. W. and Chambliss C. K., 2009. Occurrence of pharmaceuticals and personal care products (PPCPs) in fish: results of a national pilot study in the U.S. Environmental Toxicology Chemistry, 12, 2587-2597.
30
Simansky K. J., Jakubow J., Sisk F. C., Vaidya A. H. and Eberle-Wang K., 1992. Peripheral serotonin is an incomplete signal for eliciting satiety in sham-feeding rats. Pharmacological Biochemistry Behavior, 43, 847–854.
31
Somoza G. M., Yu K. L. and Peter R. E., 1991. Effects of serotonin on gonadotropin and growth hormone release from in vitro perifused goldfish pituitary fragments. Genomic Comparative Endocrinology, 82, 103–110.
32
Tierney A. J., Greenlaw M. A., Dams-O’Connor K., Aig S. D. and Perna A. M., 2004. Behavioral effects of serotonin and serotonin agonists in two crayfish species, Procambarus clarkii and Orconectes rusticus. Comparative Biochemistry and Physiology A., 139, 495-502.
33
Valassi E., Scacchi M. and Cavagnini F., 2008. Neuroendocrine control of food intake. Nutrition Metabolism Cardiovascular Disease, 18, 158–68.
34
Volkoff H., Bjorklund J. M. and Peter R. E., 1999. Stimulation of feeding behavior and food consumption in the goldfish, Carassius auratus, by orexin-A and orexin-B. Brain Research, 846, 204–209.
35
Wong D. T., Perry K. W. and Bymaster F. P., 2005. The discovery of fluoxetine hydrochloride (Prozac). Nature Reviews Drug Discovery, 4(9), 764–774.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) بر مهار آنزیم پلی فنول اکسیداز و روند ملانوزیس در میگو پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei)
ملانوزیس میگو، نوعی تغییر رنگ سطحی مهم است که توسط آنزیم پلی فنول اکسیداز ایجاد می شود. این آنزیم سبب اکسیداسیون فنول ها و تولید رنگدانه تیره و نامحلول ملانین می گردد. مشتقات سولفیتی به شکل گسترده ای برای مقابله با ملانوزیس کاربرد دارند، اما مشکلات ناشی از این ترکیبات از جمله بروز واکنش های حساسیت زا و ایجاد مشکل در افراد مبتلا به آسم، یافتن جایگزین های طبیعی برای این ترکیبات را ضروری ساخته است. این تحقیق با هدف بررسی اثر اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) بر مهار آنزیم پلی فنول اکسیداز (تیروزیناز) و روند ملانوزیس در میگوی پرورشی پا سفید غر بی (Litopenaeus vannamei) طی 10 روز نگهداری در یخ صورت گرفت. نتایج GC/MS نشان داد که تیمول، کارواکرول و پارا سیمن با مقادیر به ترتیب 8/50، 4/14 و 6/10 % ترکیبات اصلی اسانس آویشن شیرازی را تشکیل می دهند. توانایی مهار رادیکال آزاد DPPH اسانس آویشن شیرازی بر اساس میانگین(±SD) IC50 برابر با 02/0±8/0 mg/ml بود. فعالیت آنزیم تیروزیناز در غلظت %25/0 اسانس آویشن شیرازی به میزان 2/63 درصد کاهش یافت. همچنین، غوطه وری میگو در تعلیق 1% اسانس آویشن سبب به تأخیر افتادن روند ملانوزیس طی 10 روز نگهداری در یخ شد. به شکل کلی، اسانس آویشن شیرازی می تواند به عنوان یک کمک فرآیند طبیعی و مؤثر جهت افزایش ماندگاری میگو طی دوره نگهداری در یخ مورد استفاده قرار گیرد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_103556_f633a3865112cc9124172e5f13e92ca5.pdf
2014-09-23
109
118
10.22092/isfj.2014.103556
آویشن شیرازی
میگو
تیروزیناز
ملانوزیس
الهام
نصیری
1
AUTHOR
مرضیه
موسوی نسب
marzieh.moosavi-nasab@mail.mcgill.ca
2
LEAD_AUTHOR
سید شهرام
شکر فروش
3
AUTHOR
محمد تقی
گلمکانی
4
AUTHOR
کریمی ع.، 1386. اهمیت و ارزش غذایی میگو در امنیت غذایی و سلامت جامعه،1390 ،www.shilat.com.
1
ماجدی م.، 1383. کنترل کیفی آبزیان و فراورده های تبدیلی آن، تهران، انتشارات آذرگان، صفحات 103-101.
2
مؤیدی، م.؛ گلمکانی، م.ت. و موحد، س.، 1392. بررسی خصوصیات اسانس پوست واریته های مختلف لیموترش خارگی (Citrus limon) استخراج شده به روش تقطیر با آب. مجله علوم غذایی و تغذیه، 88-75 ،(1)11.
3
Chang C.T., Chang W.L., Hsu J.C., Shih Y. and Chou S.T., 2013. Chemical composition and tyrosinase inhibitory activity of Cinnamomum cassia essential oil. BotanicalStudies, 54, 10-17.
4
Chen J.S., Wei C.I., Rolle R.S., Otwell W.S., Balaban M.O. and Marshall M.R., 1991. Inhibitory effect of kojic acid on some plant and crustacea polyphenoloxidases. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 39, 1396–1401.
5
Chen Q.X., Song K.K., Qiu L., Liu X.D., Huang H.and Guo H.Y., 2005. Inhibitory effects on mushroom tyrosinase by p-alkoxybenzoic acids. Journal of Food Chemistry, 91, 269–274.
6
Furneri P.M., Marino A., Saija A., Uccella N. and Bisignano G., 2002. In vitro antimycoplasmal activity of oleuropein. International Journal of Antimicrobial Agents, 20, 293-296.
7
Gandomi H., Misaghi A., Akhondzadeh Basti A., Bokaei S., Khosravi A., Abbasifar A. and Jebelli Javan, A., 2009. Effect of Zataria multiflora Boiss essential oil on growth and aflatoxin formation by Aspergillus flavusin culture media and cheese. Food and Chemical Toxicology, 47, 2397–2400.
8
Gokoglu N. and Yerlikaya P., 2008. Inhibition effects of grape seed extracts on melanosis formation in shrimp (Parapenaeus longirostris). International Journal of Food Science and Technology, 43, 1004–1008.
9
Golmakani M. and Rezaei K., 2008. Microwave-assisted hydrodistillation of essential oil from Zataria multiflora Boiss. European Journal of Lipid Science and Technology, 110, 448-454.
10
Kim J., Marshall M.R. and Wei C., 2000. Polyphenoloxidase. In: Haard NF, Simpson BK (Eds.) Seafood enzyme utilization and influence on postharvest seafood quality (pp. 271–315). New York: Marcel Dekker.
11
Kostaki M., Giatrakou V., Savvaidis I.N. and Kontominas M.G., 2009. Combined effect of MAP and thyme essential oil on the microbiological, chemical and sensory attributes of organically aqua cultured sea bass (Dicentrarchus labrax) fillets. Journal of Food Microbiology, 26, 475-82.
12
Kubo I. and Kinst-Hori I., 1998a. Tyrosinase inhibitors from cumin. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 46, 5338−5341.
13
Kubo I. and Kinst-Hori I., 1998b. Tyrosinase Inhibitors from Anise Oil. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 46, 1268−1271.
14
Matsuura R., Ukeda H. and Savwamura M., 2006. Tyrosinase inhibitory activity of citrus essential oils. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 54, 2309−2313.
15
Miliauskas G., Van Beek T.A., De Waard P., Venskutonis R.P. and Sudholter E.J.R., 2005. Identification of radical scavenging compounds in Rhaponticum carthamoides by means of LC-DAD-SPE-NMR. Journal of Natural Product, 68, 168-172.
16
Montero P., Lopez-Caballero M.E. and Perez-Mateos M., 2001. The effect of inhibitors and high pressure treatment to prevent melanosis and microbial growth on chilled prawns (Penaeus japonicus). Journal of Food Science, 66, 1201–1206.
17
Nirmal N.P. and Benjakul S., 2011. Retardation of quality changes of Pacific white shrimp by green tea extract treatment and modified atmosphere packaging during refrigerated storage. International Journal of Food Microbiology, 149, 247–253.
18
Nirmal N.P. and Benjakul S., 2009. Effect of ferulic acid on inhibition of polyphenoloxidase and quality changes of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) during iced storage. Food Chemistry, 116, 323–331.
19
Ramírez E.C., Whitaker J.R. and Virador V.M., 2003. Polyphenol oxidase. In: Whitaker JR, Voragen AGJ, Wong DWS (Eds.) Handbook of food enzymology (pp. 509–523). New York: Marcel Decker Inc.
20
Sharififar F., Moshafi M.H., Mansouri S.H., Khodashenas M. and Khoshnoodi M., 2007. In vitro evaluation of antibacterial and antioxidant activities of the essential oil and methanol extract of endemic Zataria multiflora Boiss. Food Control, 18, 800–805.
21
Son S.M., Moon K.D. and Lee C.Y., 2000. Kinetic study of oxalic acid inhibition on enzymatic browning. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 48,2071–2074.
22
Taoukis P.S., Labuza T.P., Lillemo J.H. and Lin S.W., 1990. Inhibition of shrimp melanosis (black spot) by ficin. Lebensmittel-Wissenschaft and Technologie, 23, 52–54.
23
Ultee, A., Gorris, L.G. and Smit, E.J., 1998. Bactericidal activity of carvacrol towards the food-borne pathogen Bacillus cereus. Journal of Applied Microbiology, 85, 211–218.
24
Zangiabadi M., Sahari M.A., Barzegar M. and Naghdi Badi H., 2012. Zataria multiflora and Bunium persicum essential oils as two natural antioxidants. Journal of Medicinal Plants, 1(41), 8-21
25
Zheng Z.P., Cheng K.W., Chao J., Wu J. and Wang M., 2008. Tyrosinase inhibitors from paper mulberry (Broussonetia papyrifera). Food Chemistry, 106, 529–535.
26
ORIGINAL_ARTICLE
برخی از خصوصیات زیستی ماهی بنی (Mesopotamichthys sharpeyi)د ر تالاب شادگان
در این تحقیق برخی از خصوصیات زیستی ماهی بنی در تالاب شادگان مورد بررسی قرار گرفت. نمونه برداری ماهانه در پنج ایستگاه شامل دورق(ماهشهر)، رگبه ، خروسی ، سلمانه ، عطیش انجام گردید. در طول اجرای پروژه از فروردین 1392 تا اسفند 1392، چهارصد و سی وهفت عدد ماهی بیو متری و تشریح شد. میانگین طولی(±SD) برحسب میلی متر به ترتیب جنس نر 28±252 (357- 95 )، جنس ماده 38±249 (374- 115) و میانگین وزنی (±SD) برحسب گرم به ترتیب جنس نر 31±218 (366- 18) و جنس ماده 39±232 (651- 15 ) بدست آمد. رابطه طول - وزن گونه جنس نر معادل W=0.000006L3.11(R2=0.85) و جنس ماده معادل W=0.000005L3.14(R2=0.86) بود. زمان تخم ریزی ماهی بنی بین فروردین تا تیر و طول بلوغ جنس نر و جنس ماده به ترتیب 208 میلی متر ،220 میلی متر و وزن بلوغ گونه های یاده شده به ترتیب 97گرم ، 113گرم و میزان تولید به ازای بیوماس آنها 53/0، 50/0به ازای سال بدست آمد.
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110174_51cbc0d6b9df2bdfb49d241525486a0f.pdf
2014-09-23
119
128
10.22092/isfj.2017.110174
ماهی بنی
تالاب شادگان
خصو صیات زیستی
تولید به ازای بیوماس
سیداحمدرضا
هاشمی
seyedahmad83@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
رسول
قربانی
2
AUTHOR
فرهاد
کیمرام
farhadkaymaram@gmail.com
3
AUTHOR
سیدعباس
حسینی
4
AUTHOR
غلامرضا
اسکندری
5
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
6
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
یافته علمی کوتاه: اثر نمک سود کردن بر روی زمان ماندگاری ماهی سارم دهان بزرگ Scomberoides commersonnianus
https://isfj.areeo.ac.ir/article_110175_780bcd12615ac26f15663826902ef8b5.pdf
2014-09-23
129
138
10.22092/isfj.2017.110175
ماهی سارم دهان بزرگ
نمک سود کردن
زمان ماندگاری
زهرا
هادی زاده
zahrahadizadeh65@yahoo.com
1
LEAD_AUTHOR
نرگس
مورکی
2
AUTHOR
سهراب
معینی
dr_smoini@yahoo.com
3
AUTHOR