یافته علمی:تاثیرنوسانات شوری بر میزان رشد، زیتوده و رنگدانه کلروفیل a و کارتنوئید ریزجلبک Nannochloropsis oculata

نویسندگان

1 دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس3

2 پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس

3 دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس

چکیده

ریزجلبک­ها در ابتدای زنجیره غذایی آبزیان دریایی قرار دارند و از ضروریات غذایی سالن­های تکثیر آبزیان مختلف دریایی از جمله دو کفه­ای­­ها، نرم­تنان، مراحل لاروی سخت پوستان و مراحل اولیه رشد برخی ماهی­ها هستند. ریزجلبک­ها همچنین برای تولید زئوپلانکتون­ها ( کوپه ­پودا، روتیفر، آرتمیا) ضروری هستند(Gent, 2001).یکی ازمشهورترین گونه­های جلبک مورد استفاده در آبزی‌پروری عبارت است از Nannochloropsis oculata که رایج‌ترین ریزجلبک مورد استفاده برای تولید زئوپلانکتون ها (روتیفر ) می باشد (.(Heasman, et al., 2000یکی از مهمترین عوامل برای کشت ریزجلبک شوری است که برای به دست آوردن بیشترین مقدار تولید، بهتر است ریزجلبک در دامنه شوری به نسبت کم پرورش داده شوند.یکی ازکاربردهای اصلی ریزجلبک‌ها در زمینه آبزی‌پروری، مربوط است به تهیه مواد مغذی یا مکمل ها و مصرف تازه به تازه آنها (به عنوان صرفا" مکمل یا ماده افزودنی به تغذیه اصلی )و یا برای رنگدار کردن گوشت ماهی آزاد و تحریک دیگر فعالیت های موجودات است (آذری تاکامی و چرمهینی1390). یکی از جذاب‌ترین ویژگی‌های موجودات آبزی رنگ آنها می‌با‌شد که منبع رنگی آنها از مواد غذایی موجود در محیط زیست آنهامی­باشد (Durmaz, 2008 & Kop). ریزجلبک­ها حاوی رنگدانه­های زیادی مثل کلروفیل (از5/0 تا 1 درصد وزن خشک آنها) و کارتنوئیدها (به طور متوسط 1/0 وزن خشک آنها) می باشند                       

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Study on the effect of salinity changes on growth, biomass, and chlorophyll a and carotenoid pigments of microalgae Nannochloropsis oculata

نویسندگان [English]

  • M Rahimisuruee 1
  • K Rohani Ghadikolaei 2
  • F Mohammadizade 3
چکیده [English]

In this study the effect of different salinities on growth, biomass and pigments of Chlorophyll a and Carotenoid were tested to determine an appropriate salinity to produce maximum growth, biomass and carotenoids of microalgae (N.oculat).Therefore, the 2-liter flask contains microalga under different levels of salinities (20, 25, 32, 35, 50 ppt), and under laboratory conditions( temperature 25-22 ° C, PH. 8, and light period of 12 h light and 12 h darkness) were cultured for 14 days. The results of present study indicate that The maximum growth of microalgae (72.63×106cell ml–1) and the maximum  specific growth rate of microalgae        (0.33 d⁻1) included in treatments with salinity of 25 and 30 ppt, that had a significant difference with the other treatments (p<0.05) .The maximum dry weight (0.022 g/lit) and amount of chlorophyll a (3.92 mg lit)  was  recorded  in treatments with salinity of 30 ppt and shows significant difference with the other treatment (p<0.05). The Minimum amount of carotenoids (0.41 mg lit) was related to treatment with salinity of 50 ppt. shows a significant difference with other treatments (p<0.05).According to the results we can say that microalgae resistant to high salinity and a wide range of salinity has the ability to grow and produce carotenoids.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Salinity
  • Chlorophyll a
  • carotenoid
  • Growth
  • Nannochloropsis oculata

مراجع

Edge, R., McGarvey, D.J. and Truscott, T.G., 1997. The carotenoid as antioxidants. Areview. Journal of Photochemistry and Photobiolog Biology, pp. 189−200. Fazeli, M.R., Tofighi, H., Samadi, N., Jamalifar, H. and Fazeli, A., 2006. Carotenoids accumulation by Dunaliellater tiolecta (lake urmia isolate) and Dunaliella salina (ccap 19/18 &wt) under stress conditions. Daru, 14(3):117−129. Fu, F. and Bell, P.R.F., 2003. Effect of salinity on growth, pigmentation, N2 fixation and alkaline phosphatase activity of cultured Trichodesmium sp. Marine Ecology Progress Series, 257: 69–76. Gent University, 2001. Production and use of livefood for aquaculture. Courseware developed at the Laboratory of Aquaculture & Artemia Reference Center, Gent University. Gourveia, L.A.D., Rema, P.B., Pereira, O.B. and Empis, J.C., 2003. Colouring ornamental fish (Cyprinus carpio and Carassius auratus) with microalgal biomass. Aquaculture Nutrition, 9(2): 123−129. Gu, N., Lin, Q., Li,G., Qin,G., Lin, J. and Huang, L., 2012. Effect of Salinity Chang on Biomass and Biochemical Composition of Nannochloropsisocuulata. Journal of the WORD AQUACULTURE SOCIETY, 43, NO.1. Guedes, A.C., Amaro, H.M. and Malcata, F.X., 2011. Microalgae as Sources of Carotenoids. Mar. Drugs, 9: 625-644. Guillard, R.R.L. and Ryther, J.H., 1962. Studies on marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt, and Detonulaconfervacea (Cleve) Gran. Canadian Journal of Microbiology, 8: 229–239. Guillard, R.R.L., 1973. Division rates. In: Stein, J.R. (Ed.), Handbook of phycological methods: culture methods and growth measurements. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 289–311. Heasman, M., Diemar, J., O'connor, W., Sushames, T. and Foulkes, L., 2000. Development of extended shelf-life microalgae concentrate diets harvested by centrifugation for bivalve molluscs, Aquaculture Research, 31: 637−659. Kim, D.I., Matsuyama, Y., Nagasoe, S., Yamaguchi, M., Yoon, Y.H.,Oshima, Y., Imada, N. and Honjo, T., 2004. Effects of temperature, salinity and irradiance on the growth of the harmful red tide dinoflagellate Cochlodinium polykrikoides Margalef (Dinophyceae). J.plankton.Res, 26: 61−66. Kirst, G.O., 1989. Salinity tolerance of eukaryotic marine algae. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 40:21–53. Kop, A. and Durmaz, Y., 2008. The effect of synthetic and natural pigments on th colours of the cichlids (Cichlasomaseverum sp., Hekcel 1840). Aquaculture, 16:117−122. Parsons, T.R., Maita, Y. and LALM, C.M., 1984. Determination of chlorophylls and total carotenoids: spectrophotometric method. In: A Manual of Chemical and Biological Methods for Seawater Analysis (Ed. by T. R. Parsons, Y. Maita & C. M. Lalli), pp. 101-104. Pergamon Press, Oxford, New York. Pisal, D.S. and Lele, S.S., 2005. Carotenoid production from microalga, Dunaliella salina. Indian J. Biotech, 4:476−483. Rebolloso Fuentes, M.M., AciénFernández, G.G., Sánchez Pérez, J.A. and Guil Guerrero, J.L., 2000. Biomass nutrient profiles of the microalga Porphyridium cruentum. Food Chem, 70, 345–353. Rosales, N., Ortega, J., Mora, R. and Morales, E., 2005. Influence of salinity on the growth and biochemical composition of the Cyanobacterium synechococcus. Ciencias Marinas, 31:349–355. Sharma, O.P., 2001.Text book of algae. Tata McGraw Hill Publishing, India. Spolaore, P., Joannis-Cassan, C., Duran, E. and Isamber, A., 2010. Optimization of Nannochloropsis groeth using the response surface method.Journal of chemical technology and biotechnology. 81:1049. Sukenik, A., Garmeli, Y. and Berner, T., 1989. Regulation of fatty acid composition by irradiance level in the eustigmatophyte Nannochloropsis sp. J. Phycol. 25: 686−692. Tim, J., Bowden, T.J., Thompson, K.D., Morgan, A.L. and Nikoskelainen, A., 2007. Seasonal variation and immune response: A fish perspective. Department of Zoology, University of Aberdeen, Scotland, UK. pp. 695−70 Warr, S.R.C., Reed, R.H., Chudek, J.A., Foster, R. and Steward, W.D.P., 1985. Osmotic adjustment in Spirulinaplatensis. Planta 163: 424–429. Wellburn, A.R., 1994. The spectral determination of chlorophylls a and b, as well as total carotenoids, using various solvents with spectrophotometers of different resolution. Journal of Plant Physiology, 144: 307−313.
مجله علمی شیلات ایران
دوره 25، شماره 3 - شماره پیاپی 96
96
مهر و آبان 1395
صفحه 263-272

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار